Остеосинтез у собак и кошек. Операции при переломах крупных костей конечностей у собак Ветеринария для собак спицы для остеосинтеза

За последние двадцать лет, взгляд на лечение переломов костей у кошек и собак изменился, постоянно совершенствуются методы и меняются подходы.

На сегодняшний день современный ветеринарный специалист практически забыл о гипсовой повязке. Использование методов остеосинтеза в клинической практике обеспечивают условия оптимального существования кошек и собак с переломами костей и позволяют адекватно и быстро реабилитироваться.

Процесс скорейшего и качественного выздоровления затрагивает не только профессиональные интересы врача, но и в первую очередь интересы владельцев.

Понятие “остеосинтез” происходит от греческих слов osteon (кость) и synthesis (соединение) и предполагает соединение костных отломков и устранение их подвижности с помощью фиксирующих приспособлений.

Много лет при лечении переломов костей используются классические методики, которые включают в себя погружной и наружный остеосинтез.

Погружной остеосинтез представляет собой метод, который предполагает использование стабилизирующих систем внутри тканей организма и располагаются конструкции в зоне перелома.

Погружной остеосинтез в зависимости от расположения фиксатора по отношению к кости бывает внутрикостным (интрамедуллярным), накостным и чрескостным.

Наружный остеосинтез предполагает использование стабилизирующих систем вне зоны перелома кости (аппараты внешней фиксации).

Существуют комбинированные методы, которые включают сочетание двух и более методов (внутрикостно-накостный, чрезкостно-накостный или внутрикостно-чрезкостный).

Главной задачей лечения переломов интернациональной ассоциации остеосинтеза (АО) является анатомическая репозиция, стабильная фиксация, ранняя нагрузка.

На сегодняшний день репозицию и фиксацию рекомендуют производить с учётом жизнеспособности тканей, поэтому первостепенное значение придают уменьшению травматизма, сохранению кровоснабжения.

У животных, на наш взгляд, основными принципами являются стабильная фиксация, осевая репозиция и ранняя функциональная нагрузка, что не противоречит методам биологического остеосинтеза, а протоколы и классификационные подходы к выбору метода лечения не совсем подходят нашим пациентам в отличие от человека.

Интрамедуллярный остеосинтез штифтами и спицами у кошек и собак (фото 1а, б, в).

Остеосинтез накостными пластинами у кошек и собак (фото 2а-г).

Методы внешней фиксации (внеочаговый остеосинтез) у кошек и собак (фото 3а-е).

Сочетание различных методов остеосинтеза у кошек и собак (фото 4а-г).

Около и внутрисуставные переломы у кошек и собак (фото 5а-е). Артродез у собак (фото 6а, б, в, г). Реконструктивные методы остеосинтеза у кошек и собак (фото 7а, б). Фото 7а. Рентгенограмма. Дистракционный метод растяжение-напряжением без остеотомии при “недокусе” у собаки. Срок дистрации 54 дня. Осложнения остеосинтеза и методы коррекции (ложный сустав) (фото 8а-в). Фото 8а. Рентгенограмма. Гипертрофический псевдоартроз после остеосинтеза у собаки. Остеотомия и фиксация в аппарате Илизарова.

В отделении травматологии и ортопедии осуществляется лечение широкого спектра патологий опорнодвигательного аппарата мелких домашних животных:

• Болезни суставов (артриты и артрозы) различной этиологии
• Патологии сухожильно-связочного комплекса, миопатии
• Остеосинтез у животных - лечение с применением хирургических методов

Переломы у кошек

Переломы у кошек и переломы у собак – явление достаточно распространенное. Падение с высоты, авария на дороге, стычка с другими животными – все это может стать причиной серьезных переломов. Кроме того, важно учитывать, что переломы у собак и кошек могут быть вызваны различными факторами, ослабляющими кости:

• Заболевания суставов разного происхождения;
• Недостаток питательных веществ в рационе. В том числе кальция;
• Остеосинтез и т.д.

Переломы у собак

Переломы у кошек и собак могут быть открытыми и закрытыми. В любом случае важно обратиться к специалисту для оперативного оказания помощи или для точной диагностики. Главные признаки перелома – припухлости, боль, невозможность становиться на сломанную конечность и неестественное ее положение.
Хирургическое вмешательство не всегда является обязательным, но при серьезных переломах может быть необходимым. Для фиксации переломов чаще всего используются гипсовые или полимерные повязки, которые предотвращают излишнее движение и способствую быстрому срастанию костей. В более сложных ситуациях может потребоваться внутрикостная фиксация, если стандартными средствами надежно зафиксировать положение кости невозможно. Также порой используются фиксирующие металлические пластины, которые обеспечивают прочное и надежное сцепление все время восстановления.
Разумеется, переломы у собак и переломы у собак – неприятное явление, но в случае такой травмы очень важно незамедлительно обратиться к ветеринару. Иначе кость может начать срастаться неправильно, что в итоге принесет сильный ущерб здоровью животного в будущем. А возможно, понадобится вновь ломать кость и ставить ее в нужное положение. Помните, что мы в ответе за тех, кого приручили. Берегите своих любимцев!

Анализ хирургических методов лечения переломов у собак и кошек.

На сегодняшний день чаще всего применяются следующие методы фиксации переломов.
Консервативный (нехирургический) метод иммобилизации переломов с помощью гипсовых или полимерных повязок, желобоватых шин (полимерные трубки, разрезанные вдоль длинной оси, на худой конец - большие шприцы). Данный метод имеет ряд негативных моментов. Во-первых, сама по себе закрытая редукция перелома трудно осуществима, поскольку из-за наличия мягких тканей, да ещё развивающегося травматического отёка – точное сопоставление отломков кости маловероятно. Исключение составляют поперечные переломы по типу «зелёной ветки». Второй отрицательный момент наступает через несколько дней, когда спадает травматический отёк и конечность начинает свободно двигаться внутри гипсовой повязки. В это время наиболее вероятно смещение отломков кости, а соответственно перелом либо криво срастается, либо возникает псевдоартроз. Поэтому в Западной Европе ветврачи через 1-2 недели меняют гипсовую повязку, а это процесс не безболезненный. Поскольку правильно наложенная гипсовая повязка должна блокировать смежные суставы – может возникнуть их контрактура при длительном ношении повязки. Проблема потёртостей и декубитальных язв тоже весьма актуальна. К положительным сторонам вопроса можно отнести то, что ни гипсовая повязка, ни шины не замедляют продольного роста кости, а это важно для молодых собак больших и гигантских пород, т.е. быстрорастущих. Кроме того, кости у таких животных с довольно слабым кортикальным слоем (проминаются под давлением пальца - последствия остеодистрофии) поэтому фиксация с помощью металлоконструкции весьма проблематична. В завершение – цена, аргумент немаловажный.
Хирургические методы иммобилизации перелома .

Интрамедуллярный остеосинтез

Исторически до 80-ых годов 20 века широко использовалась внутри костная фиксация. Для этого использовались: гвоздь Кюнчера, штифты Богданова, Раша, Штайнмана, а также штифты собственной конструкции. Позже в гуманной практике стал применяться стягивающий гвоздь. Однако в ветеринарной практике он не прижился так как методика установки сложна и требует специального инструмента и подготовки врача. Часто у мелких животных мы используем пучок спиц Киршнера. Применение внутри костного имплантата основано на принципе «скользящей шины», т.е. отломки могут скользить вдоль штифта. Однако действие мышц-антагонистов способствует сближению, а не расхождению отломков. По моим наблюдениям этот вид остеосинтеза - наиболее прочный. В редких случаях наблюдалось сгибание штифта, но переломов никогда. К положительным аспектам применения интрамедуллярного остеосинтеза следует отнести малую травматизацию отломков кости. Ведь фактически нам нужен только открытый доступ к месту перелома, надкостница, инсерции мышц не травмируются при введении штифта, особенно при простых, безоскольчатых переломах. При переломах по типу «зелёной ветки» у молодых, быстрорастущих животных, интрамедуллярный штифт предпочтительнее поскольку не препятствует продольному росту кости, а соответственно вальгусному её искривлению. Если хирург планирует удаление штифта после полного срастания перелома, то этот метод удобен тем, что требует минимального разреза, а значит предотвращает повторную травму мягких тканей. Переломы плечевой кости часто локализуются по проекции лучевого нерва и при снятии пластины всегда есть опасность его разрыва со всеми вытекающими последствиями, тогда как при удалении штифта это осложнение физически невозможно. К недостаткам интрамедуллярного остеосинтеза следует отнести необходимость иметь штифты разной ширины с интервалом 1 мм, а также свёрла соответствующего диаметра. Кроме того, нужно учитывать различную форму интрамедуллярной полости. Например, у кошек она имеет форму ровного цилиндра, тогда как у собак: плечевая кость треугольник; бедренная и большеберцовая «песочные часы», что заставляет хирурга выбирать ширину штифта по самой узкой части. Штифт должен заходить плотно, чтобы не возникло угловых смещений и ротации отломков. Ротация отломков серьёзный недостаток этого метода остеосинтеза. Мы в нашей клинике решали эту проблему путём применения штифтов с острыми краями, которые врезались в губчатый слой кости. В гуманной медицине с этой целью применяли шурупы, проведённые через весь диаметр кости и через интрамедуллярный штифт в верхнем и нижнем отломках, либо дополняли штифт наружным костным фиксатором. Тяжёлые, оскольчатые переломы диафиза кости или продольная трещина отломка – прямое противопоказание для интрамедуллярного остеосинтеза. К серьёзным недостаткам следует отнести травмирование сустава при введении штифта через него, например, коленного при остеосинтезе большеберцовой кости.

Металлические пластины для скрепления отломков кости (накостный остеосинтез).

Применение металлических пластин стало важной вехой в развитии практики остеосинтеза, поскольку позволило значительно сократить сроки реабилитации больного животного. Достигается это возможностью ранних физических нагрузок на травмированную конечность и как следствие усиление кровообращения и процессов регенерации в зоне перелома. Кроме того, при применении пластин не затрагиваются смежные с переломом суставы, что также способствует ранней физической активности и снижению болевой реакции. По законам биомеханики –пластина не лучший способ для восстановления целостности кости, тюк. крепление отломков располагается сбоку от центральной оси и на металл действуют мощные силы сгибания, что при нарушении правил наложения пластины ведёт к её изгибанию или перелому. В основном переломы пластин происходят в зоне отверстий под шурупы (где тонко – там и рвётся). Способствуют этому лизис кости и миграция шурупов. Тем не менее, остеосинтез пластиной позволяет осуществить жёсткое скрепление отломков, полностью исключается ротация отломков. Осуществление компрессии отломков кости позволяет значительно уменьшить образующуюся костную мозоль в размерах. При наложении пластины важно учитывать силы растяжения, действующие на кость. Наложение пластины на противоположную сторону кости (где действуют силы компрессии) ведёт к перелому пластины. Итак, пластины различаются по форме:

1. Традиционные пластины с круглыми отверстиями (Шермана, Лейна, Винейбла, Бёрнса).
2. Пластины АО/АИВФ, наиболее распространённые динамические компрессионные пластины (ДКП).
3. Специальные пластины (реконструкционные, Т-образные, резные, вертлужная впадина и т.д.).

Первые два типа пластин можно считать универсальными и взаимозаменяемыми при переломах диафиза длинных трубчатых костей (плечевой, лучевой, бедренной, большеберцовой). Важное условие – максимально точное повторение контура кости и плотное её прилегание к кортикальному слою, т.к. неточность формы создаёт плечо сил, способствующих расшатыванию шурупа и его миграции, а значит и ослаблению крепления отломков кости, и замедлению срастания кости или образованию псевдоартроза. С другой стороны, при сильном сдавливании надкостницы под пластиной возникает её ишемия и некроз. Срастание перелома, как известно, идёт за счёт васкуляризации зоны перелома из нутрии кости костного мозга и снаружи за счёт надкостницы. Вот почему так важно сохранять связь с надкостницей даже отдельных осколков. В гуманной медицине проблему ишемии решили путём поперечного рифления внутренней стороны пластины. В своей практике большой разницы в сроках срастания перелома я не заметил. Однако, если возникает необходимость снятия пластины после длительного ношения, то отмечалось меньшее врастание в кость рифленой пластины.
Применение пластин той или иной формы диктуется в первую очередь видом и местом перелома. Тут мы подходим к различному функциональному применению пластин:

1. Компрессионные.
2. Нейтрализующие.
3. Опорные.

При простых, безоскольчатых, поперечных и тупокосыхпереломахчасто при меняются компрессионные пластины. При сильной компрессии между отломками в зоне перелома васкуляризации и восстановление остеоцитов идёт вдоль компактного слоя кости, а не поперёк как при диастазе отломков.
В результате не образуется объёмная костная мозоль, кость восстанавливает свою форму без дефектов. В научной литературе дискутируется вопрос о прочности такого срастания. Действительно в моей практике было несколько случаев повторного перелома по месту предыдущего. С другой стороны, я был свидетелем как после автотравмы и удара в бедро у немецкой овчарки (ранее был перелом бедренной кости с образованием большой костной мозоли), кость осталась цела. Большая костная мозоль опасна тем, что
Возможна компрессия сухожилий, мышц и сосудисто-нервного пучка, поэтому предпочтительней компрессия отломков кости. Для создания компрессии можно использовать как традиционные, так и специальные, компрессионные пластины. В традиционной пластине, после контурирования по форме кости, над линией перелома создаётся небольшой отрицательный угол (1-2 мм). При завинчивании шурупов, особенно рядом с линией перелома, на противоположной стороне кости создаётся компрессия.
В качестве переходной формы к современным компрессионным пластинам, использовали традиционную пластину с продольной проточиной на половине пластины. После введения шурупа в ближайшее к линии перелома круглое отверстие. Второй шуруп вводится в проточину. Затем специальной струбциной осуществляли стягивание отломков, с последующей фиксацией их шурупами в других круглых отверстиях. Современные компрессионные пластины имеют овальные отверстия со скошенной дальней стенкой. По мере завинчивания шурупа его головка скользит по скошенному краю и отломок продвигается вдоль овального отверстия к линии перелома. При завинчивании шурупов от середины пластины к краям компрессия только усиливается.
Острокосые переломы диафиза со смещением отломков кости, либо переломы с крупными отломками, когда возможно восстановление целостности кости с помощью скрепляющих шурупов, требуют, тем не менее, применения пластины, нейтрализующей силы ротации и сгибания, способные сместить отломки или крупные осколки. Годятся и традиционные и компрессионные пластины. В-последних, отверстие просверливают не по дальнему краю. Естественно, пластину желательно контурировать по форме здоровой кости, для чего очень желательно иметь рентгенографический снимок здоровой кости. Здесь есть одна тонкость, скрепляющие шурупы нужно ввинчивать перпендикулярно линии перелома, а не плоскости кости. Такое размещение шурупа предотвращает смещение отломков. Когда концы отломков узкие и ввинчивание шурупа грозит разрушением кости не зазорно скрепить их проволочным кольцом. Известный ранее постулат, что проволочное кольцо - это «удавка на кость» не соответствует истине. Многолетние собственные наблюдения и данные иностранных авторов опровергают это мнение.
Тяжёлые, многооскольчатые переломы диафиза трубчатых костей, иногда с большим дефектом, внутрисуставные переломы по Сельтеру III-V требуют другого применения пластин – функционально опорных. В этом случае пластина берёт на себя нагрузку с проксимального отломка на дистальный, сохраняя длину кости и со-осность отломков. Максимальное количество ввинченных шурупов с концов пластины не помешает прочности крепления.
По нашим наблюдениям, остеосинтез тяжёлого внутрисуставного перелома коленного или локтевого суставов с помощью опорной пластины – оптимальный вариант. Замещение больших дефектов кости аутотрансплантантом губчатой кости удобнее выполнять при применении опорной пластины.
Внешние костные фиксаторы (ВКФ).
В конце 1940-х годов Эхмер адаптировал ВКФ, применяемые в гуманной медицине для ветеринарии. Показания для применения ВКФ – следующие:

• простые и оскольчатые переломы диафизов костей предплечья и голени;
• вспомогательная фиксация в комбинации с внутрикостными спицами диафизов плечевой, бедренной и большеберцовой костей;
• переломы нижней челюсти;
• открытые и инфицированные переломы;
• метаэпифизарные переломы с дефицитом костной ткани.

Все ВКФ можно классифицировать по группам:

1. Односторонние одно –или двух – плоскостные фиксаторы (1 тип). При создании такого фиксатора используются неполные стержни (слой кожи проходят один раз). ВКФ такого типа являются наименее прочными. Проблемы возникают те же, что и с пластиной, с той лишь разницей, что плечо рычага от аксиальной оси до опорного стержня увеличивается в разы. Конструкция быстро расшатывается, срастание перелома замедляется. В двух случаях наблюдалось инфицирование кости. Двойные соединительные держатели – самое слабое звено конструкции и требует периодической подтяжки винтов.
2. Двусторонние одноплоскостные фиксаторы (II типа). Здесь используются для создания основной рамки только полные фиксационные стержни. В каждый отломок вводят как минимум 2 фиксационных стержня. Расклад сил в такой конструкции взаимно уравновешивается, и фиксация отломков становится прочнее. Недостаток конструкции – слабая сопротивляемость вращательным движениям отломков. Московскими ветеринарными ортопедами (по-моему, клиника «Биоконтроль») эта конструкция была с успехом применена для лечения переломов у мелких животных (собаки той-пород и мелкие кошки). Из-за анатомических особенностей животных, фиксацию II типа удобно выполнять на костях дистальнее локтевого или коленного суставов. К примеру, ширина лучевой кости у тойтерьера 3-4 мм, диаметр интрамедуллярного пространства 1 мм и меньше. Соответственно, спица, введённая интрамедуллярно не может противостоять ни угловым, ни вращательным смещениям отломков костей (необходимо учитывать массу тела и длину рычагов). Поэтому конструкцию нужно страховать наложением лонгеты, а это утяжеляет конструкцию, да и для трофики мягких тканей не очень благоприятно. Конец спицы, выступающий из дистального конца лучевой кости может вызвать остеоартроз лучезапястного сустава. Микропластины и шурупы диаметром 1 мм по сей день, труднодоступны для приобретения. Тонкие спицы 0,6 – 0,8 мм служат фиксационными стержнями, а наружные концы, согнутые под определённым углом и склеенные Поксиполом (холодная сварка) создают конструкцию II типа. Смежные с переломом суставы не повреждаются и животное рано начинает нагружать конечность.
3. Двусторонние двухплоскостные (бипланарные) фиксаторы (III типа). Данный вид фиксатора – комбинация Iи II типов ВКФ, расположенных в 2-х плоскостях и соединённых в проксимальном и дистальном концах. Таким образом нивелируются недостатки предыдущих типов.
4. Кольцевые фиксаторы. Конструктивно – являются универсальными. Поскольку позволяют проводить фиксирующие стержни в разных направлениях (разных плоскостях), нейтрализуя силы смещения отломков. Яркий пример – аппарат Илизарова. Если для коррекции роста кости и дистракционного остеогенеза достаточно 2-х колец, то для прочного остеосинтеза так и напрашивается применение ещё 2-х колец. Такая конструкция кольцевого фиксатора выглядит тяжеловесно, особенно для собак той-пород.

Само собой разумеется, что после срастания кости ВКФ необходимо удалить.
Преимущества ВКФ:

• минимальное повреждение мягких тканей;
• позволяют раннее начало физической нагрузки на повреждённую конечность;
• дают доступ к открытым ранам (особенно при инфицированных переломах);
• позволяют избежать внедрения имплантатов в зоне перелома.

Недостатки ВКФ:

• осложнения со стороны мягких тканей;
• ограничение в применении на проксимальных отделах конечности;
• не всегда достаточная жёсткость конструкции;
• вес конструкции.

В последнее время стали появляться видеосюжеты применения имплантов с памятью формы в гуманной медицине. По сути, это плоская пружина, концы которой распрямлены и загнуты под определённым углом. В кости заранее просверливают отверстия одно со стороны эпифиза (интрамедулярно), другое поперёк диафиза. Затем обрабатывают имплант охлаждающим спреем. Охлаждённый имплант размягчается и легко растягивается. Его вставляют в просверленные отверстия, а затем поливают перекисью водорода. Перекись разлагается и выделяет тепло. Нагретый имплант стремится принять прежнюю форму и стягивает отломки кости. Метод простой и при изготовлении имплантов меньших размеров, вполне мог бы быть применим в ветеринарии.
P.S. Наиболее эффективным является тот метод, которым лучше всего владеет хирург!

Бедренная кость – одна из самых крепких в организме, поэтому её перелом может произойти лишь при серьёзных травмах или патологиях. Основные симптомы: боль, невозможность встать на повреждённую ногу. Перелом бедра у собаки нуждается в хирургическом лечении.

Бедренная кость длинная трубчатая, верхний конец имеет шаровидную головку и участвует в образовании многоосного тазобедренного сустава, укреплённого внутрикапсулярной круглой связкой.

Нижний конец бедра имеет два округлых блока для образования бедроберцового и чашеберцового суставов.

Верхний конец бедра кроме головки с ямкой под ней (для присоединения круглой связки) имеет шейку, большой и малый вертелы для присоединения группы ягодичных мышц. Поэтому при болезни Пертеса чаще наблюдается перелом шейки бедра, как места с наибольшей нагрузкой. Вертелы соединяются межвертельным гребнем, который создаёт границы вертельной ямки.

Нижний конец бедренной кости имеет два одинаковых по размеру гребня для коленной чашечки, между которыми расположен желоб для её скольжения при движении. Нижний конец заканчивается двумя мыщелками – округлыми возвышениями для присоединения берцовых костей. Между ними находится межмыщелковая ямка.

Причины перелома бедра

По этиологии переломы можно разделить на две большие группы: травматические и патологические.

Причины травматических переломов разнообразны:

• падение с высоты;
• ДТП, наезд автомобиля;
• драка с более крупной собакой;
• удар от человека;
• и другие.

К патологическим переломам приводят несколько болезней:

• болезнь Пертеса. В результате обычно наблюдается перелом шейки бедра у мелких пород;
• онкология. Чаще регистрируется у старых собак;
• алиментарный гиперпаратиреоз. Можно встретить у щенков при белковом кормлении.

Виды переломов бедра

Помимо классификации по причинам есть деление по типу перелома:

• Неполный перелом – трещина в кости . В этом случае кость по-прежнему остаётся единым целым, трещина затрагивает лишь часть её поверхности. Это наиболее лёгкая форма травмы бедра, но достаточно опасная, так как в любой момент может перерасти в настоящий перелом.
• Вколоченный перелом . Случается, когда нагрузка направлена не поперёк кости, а вдоль. Например, когда животное прыгает со слишком большой высоты. В этом случае один обломок входит в другой. Довольно сложный вид перелома, поскольку требуется извлечение одного конца кости из другого, но он редко бывает у бедренной кости. Несмотря на самофиксацию кости, собака не способна опираться на повреждённую конечность.
• Перелом без смещения костей . Несмотря на травму, обломки не смещаются относительно друг друга, поэтому окружающие ткани не повреждаются.
• Закрытый перелом со смещением . Наиболее распространённый вид перелома. Обломки костей повреждают окружающие ткани, в результате образуется гематома или отёк. Такой тип травмы опасен внутренним кровоизлиянием, особенно при повреждении крупных сосудов бедра.
• Открытый перелом . В этом случае кусок кости прорывает мышцы, кожу и выходит наружу. При этом травма нередко осложняется инфекцией, которая проникает через образовавшуюся рану, поэтому перелом требует срочной операции.
• Множественный перелом (с осколками) . Наиболее сложный вид, требующий длительной и трудной операции, в ходе которой кость собирается по кусочкам. Часто вместе с таким переломом наблюдаются и другие повреждения внутренних систем (сосудов, нервов) или открытые раны. Такой вид травмы нередко имеет тяжёлые последствия для собаки.

Симптомы и первая помощь

Самый частый признак – сильная боль. Она не даёт собаке опираться на конечность. При попытке пощупать травмированную ногу собака ведёт себя агрессивно, может даже укусить хозяина. При осмотре конечности можно увидеть отёк, гематому, а в тяжёлых случаях и рану, иногда с обломком кости в ней. Нередко асимметрия задней конечности видна сразу, но иногда такие симптомы не обнаруживаются.

Так как собака может вести себя агрессивно, то следует сразу одеть на неё намордник, чтобы она не покусала хозяина или врача. Первая помощью заключается в фиксации конечности. Для этого нужно взять длинную крепкую и не гибкую палку и привязать её к собаке. С одной стороны – к колену, с другой – к тазу в районе тазобедренного сустава.

Нельзя стараться вправить кость самостоятельно, это вызовет невероятно сильную болевую реакцию.

К тому же вы обломками костей можете повредить сосуды и нервы. Вправлять кость должен специалист и только после проведения рентгена. Рентген делается в двух перпендикулярных плоскостях.

После фиксации конечности нужно как можно быстрее доставить собаку ветеринару. Крупных питомцев переносят на куске фанеры, натянутом одеяле, других импровизированных носилках. Не рекомендуется делать обезболивания, так как это может привести к несовместимости препаратов, которые будет использовать врач.

Лечение перелома бедра

Лечение в домашних условиях невозможно, так как состояние при переломах слишком опасное. В первую очередь проводится обезболивание и общий наркоз, чтобы собака дала спокойно себя обследовать. Далее делается рентген для выяснения положения обломков костей. Часто при переломах операцию делают сразу.

При неполных переломах (трещинах) или при закрытых переломах без смещения костей накладывается гипс или создаётся шина. Однако такой метод не всегда эффективен, поскольку собака может попытаться снять гипс, тем самым повредив себе конечность повторно. В связи с этим ветеринары предпочитают проводить операции.

Операция делается под общим наркозом, все способы фиксации можно разделить на две большие группы.

Внутрикостный остеосинтез штифтом

Первый разрез делается в месте перелома. Через него удаляют мелкие обломки костей, сгустки крови, при открытом переломе проводят обработку антибиотиками. Далее извлекают в рану верхний и нижний обломки костей так, чтобы удобно было ими манипулировать.

Далее с помощью стилета и сверла через обломок кости делается отверстие возле верхней головки бедренной кости. Его делают изнутри, сквозь костномозговой канал, через первый разрез, это нужно, чтобы ввести проводник – металлическую проволоку, которая будет задавать направление штифту.

Проводник заталкивают в кость через место перелома до самого верха, чтобы он вышел с верхнего конца кости в зоне вертикальной впадины (между головкой кости и большим и малым вертелом). Когда проводник упирается в кожу ягодицы, в этом месте делают второй разрез.

Через второй разрез вводят штифт, с помощью проводника ему задают направление. При необходимости помогают штифту молотком входить в кость. Его проталкивают до тех пор, пока он не выйдет из верхнего обломка на полсантиметра. После этого концы костей соединяют и штифт вводят полностью.

Накостный остеосинтез кольцами

Если в первом случае штифт вводится внутрь кости, то по этой методике фиксатор прикрепляют сверху к кости. Такой способ предпочтителен для мелких пород, так как их кости тонкие и не позволяют использовать внутрикостный метод . Сам фиксатор может иметь вид пластины, балки или колец.

Делается разрез в месте перелома, далее травмированную область очищают от мелких осколков кости, размозжённых тканей, сгустков крови. Фиксатор прикрепляют с помощью винтов, колец, спиц и других устройств. Всё зависит от типа фиксирующего аппарата.

Дальнейшая реабилитация

Дальнейший уход включает в себя покой, ограничение движения на первую неделю . Собака сама определит время, когда можно опираться на лапу. На третий день между обломками костей формируется мозоль, состоящая их хрящевой ткани, которая начинает окостеневать через 8-10 суток. Полное сращение кости наступает через 25-45 дней.

Анатомо-топографические данные собаки. Профилактика хирургической инфекции, стерилизация инструментов и материалов. Подготовка животного к операции и ее проведение способом соединения отломков кости пластинами. Возможные осложнения и их устранение.

ФГБОУ ВПО “Санкт-Петербургская Государственная Академия Ветеринарной Медицины”

Кафедра оперативной хирургии с основами топографической анатомии животных

Курсовая работа

Операции на конечностях

(остеосинтез на тазовой конечности при переломе бедренной кости у собаки)

Выполнила: студентка 3 курса 22 группы

Канцерова Анастасия Павловна

Санкт-Петербург 2012

1. Название операции

2. Цели операции

3. Общие сведения о животном

8. Обезболивание

9. Техника проведения операции

11. Послеоперационный уход за животным

Заключение

Список литературы

1. Название операции

Остеосинтез (osteosynthesis; греч. osteon кость + synthesis соединение) -- соединение отломков костей. Существует два вида остеосинтеза -- погружной остеосинтез и наружный чрескостный остеосинтез. При погружном остеосинтезе, фиксаторы, соединяющие костные отломки, устанавливаются непосредственно в области перелома. Наружный остеосинтез выполняется при помощи различных аппаратов, располагающихся над кожей и фиксирующих костные отломки при помощи спиц и стержней. Целью остеосинтеза является стабильная фиксация костных отломков в правильном положении до их консолидации.

2. Цели операции

Цель остеосинтеза -- обеспечение стабильной фиксации отломков в правильном положении с сохранением функциональной оси сегмента, стабилизация зоны перелома до полного сращения. Принципиально существует два вида лечения -- оперативное и консервативное. Цель этих видов лечения заключается в создании условий для восстановления целостности поврежденных костных структур и окружающих их тканей, а так же восстановлении функции поврежденного сегмента конечности. При оперативных методах лечения переломов травматологи, как правило, воздействуют непосредственно на костные фрагменты. Консервативное лечение -- это лечение без операции, врач не воздействует на костные отломки, это воздействие происходит опосредованно.

3. Общие сведения о животном

Вид, пол: собака, кобель.

Кличка: Боб

Масть, отметины: черная

Порода: беспородный

Возраст: около 4 лет

Рост, вес: в холке 65 см, 30 кг

Предварительный диагноз: перелом большой берцовой кости правой задней конечности

Диагноз при последующем наблюдении: перелом 1/3 дистальной части большеберцовой кости правой тазовой конечности

Владелец: животное бездомное

Сведений об условиях содержания и кормления нет, так как животное было найдено на улице. Так же неизвестны данные о перенесенных ранее заболеваниях, вакцинации.

Общее исследование животного.

Определение габитуса животного:

Положение тела в пространстве: вынужденное, лежачее

Телосложение: среднее

Упитанность: неудовлетворительная

Темперамент: флегматик

Конституция: грубая

Патологический очаг располагается в области правой тазовой конечности. Там можно увидеть хорошо выраженную гиперемию, отечность, при пальпации повышение местной температуры, онемение участка, небольшая крепитация.

4. Фиксация и место проведения операции

Фиксация - это укрепление животных в определенном положении с целью ограждения людей проводящих лечебную работу от травм со стороны пациента, сохранение жизни и здоровья самого пациента и предупреждение разрушения окружающих конструкций крупными и сильными животными.

У собак, чтобы они не могли наносить укусов, завязывают рот полоской марли, марлевым бинтом или тесьмой. Охватывая рот винтом, концы его сначала завязывают в подчелюстном пространстве одним простым узлом, затем окончательно закрепляют бинт на затылке морским узлом.

Собак обычно фиксируют на столе, придавая им необходимое положение. Простой операционный стол для мелких животных изготовляют из дерева: красят белой масляной или эмалевой краской. Крышка стола должна быть вогнута внутрь или иметь в середине небольшое углубление со стоками для жидкости. В ней же просверливают несколько отверстий для завязывания рта ремнями (тесьмой), применяемых для фиксации собак. Под столом на его перекладинах устраивают посредине полку, на которую ставят таз для стока в него жидкостей с крышки стола и сбора использованного перевязочного материала.

Рис. 9. Укрепление собаки на столе: 1--спинное положение; 2--боковое; 3--брюшное.

Для укрепления собаки на столе в спинном положении к ее грудным конечностям в области предплечья привязывают или фиксируют петлей веревки (тесьму). Веревку от каждой конечности пропускают между конечностями и грудью и далее под спину животного на противоположную сторону стола к соответствующему отверстию; подтягиванием за веревку конечность собаки приближают к грудной клетке, после чего завязывают веревку. Тазовые конечности вытягивают и обе привязывают к задней, части рамы стола.

Кошек на время операции помещают в специальные кожаные или из плотной материи мешки либо завертывают в кусок плотной материи, оставляя открытым необходимый для операции участок. Еще лучше при всяком методе фиксации надевать на все конечности кошки специальные мешочки (чулки) из прочной ткани и затем фиксировать их соответствующим образом.

Во время данной операции животное фиксировалось в боковом положении

5. Анатомо-топографические данные

Мускулатура тазовой конечности собаки. А - с латеральной стороны В - с медиальной стороны 1. портняжная мышца 2. полусухожильная мышца 3. двуглавая мышца бедра 4. краниальная большеберцовая мышца 5. длинный разгибатель пальцев 6. длинная малоберцовая мышца 7. длинный сгибатель большого пальца 8. короткий сгибатель пальцев 9. икроножная мышца 10. ахиллово сухожилие 11. межкостные мышцы 12. короткий разгибатель пальцев 13. короткая малоберцовая мышца 14. длинный сгибатель пальцев 15. стройная мышца

Область поражения локализуется на правой тазовой конечности. Перелом находится на большой берцовой кости. Ее окружают мышцы:

Портняжная мышца

Краниальная большеберцовая мышца

Длинный разгибатель пальцев

Длинная малоберцовая мышца

Длинный сгибатель большого пальца

Короткий сгибатель пальцев

Иннервация мышц осуществляется большеберцовым и малоберцовыми нервами.

Сосуды питающие мышцы:

Задняя большеберцовая артерия

Передняя большеберцовая артерия

Наружная подвздошная вена

Медиальная вена сафена

Каудальная бедренная вена

6. Инструменты, перевязочный материал, медикаменты

Скальпель остроконечный, ножницы прямые тупоконечные и остроконечные, раневые крючки, пинцеты анатомические и хирургические, зажимы кровоостанавливающие, иглодержатель, иглы хирургические - изогнутые, полукруглые, шприцы 5- и 10-граммовые, инъекционные иглы, стерилизаторы для инструментов и шприцев, 0,5% раствор новокаина, 5% спиртовой раствор йода, 0,5% раствор нашатырного спирта, перевязочный материал (стерильные бинты, тампоны, вата), стерильные нити ПГА, полисорб, средства для фиксации животных, малые хирургические операционные столы типа Виноградова, фиксирующие элементы: пластинки, винты, ключ для изгиба пластинок, отвертка для завертывания винтов.

7. Профилактика хирургической инфекции

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ИНСТРУМЕНТОВ

В основном существуют два способа стерилизации инструментов: действием высоких температур (кипячение, фломбирование и др.) и "холодный" - в дезинфицирующих растворах.

Для стерилизации инструментов кипячением применяют простые или электрические стерилизаторы (рис. 22), имеющие съемную решетку с ручками. Стерилизацию проводят в обычной воде с добавлением щелочей: 1 % натрия карбоната; 3% натрия тетрабората (бура), 0,1% едкого натра. Продолжительность кипячения зависит от растворенной в воде щелочи: с натрия карбонатом - 15 мин, с бурой - 20, с едким натром - 10 мин. Щелочи предупреждают коррозию металла, усиливают эффективность стерилизации и сокращают время кипячения.

Порядок стерилизации: раствор доводят до кипения, за этот период вода освобождается от растворенного в ней кислорода и нейтрализуется щелочью. Перед стерилизацией инструменты проверяют на пригодность. Если они были покрыты вазелином, то его вытирают спиртом или эфиром. Режущую часть скальпеля предварительно заворачивают в марлю. Хирургические иглы нанизывают на кусок марли, чтобы они не "затерялись" в стерилизаторе, если инструментов много.

По окончании стерилизации инструменты извлекают с решеткой стерилизатора и раскладывают на инструментальном столике, покрытом в три ряда стерильной простыней или полотенцем. При этом соблюдают определенный порядок -- однотипные инструменты кладут на одном месте и в определенной, характерной для каждой операции последовательности. Марлю, в которой были завернуты скальпели, следует развернуть. Разложенные инструменты покрывают стерильной простыней или полотенцем.

Инструменты, бывшие в употреблении (после вскрытия гнойников, работы с трупным материалом), кипятят (не менее 30 мин) в щелочной жидкости с добавлением 2 % лизола или карболовой кислоты.

Стеклянные предметы (шприцы и др.) помещают в стерилизатор в разобранном виде перед его нагреванием. Шприцы и стеклянную посуду для анестезирующих растворов кипятят в дистиллированной воде, так как щелочные растворы способствуют разложению некоторых местно-анестезирующих средств.

Стерилизация инструментов фломбированием (обжиганием)

Разобранный инструмент раскладывают в чистый эмалированный тазик или ванну, наливают необходимое количество спирта и зажигают его. В период горения спирта инструмент желательно перевернуть, поскольку в местах соприкосновения с дном он не может хорошо простерилизоваться. Этот способ применяется при оказании экстренной хирургической помощи, а также для стерилизации эмалированной посуды и инструментов, которые по габаритам не помещаются в стерилизатор. Инструменты также стерилизуют в специальных шкафах, при температуре 150-- 160 С в течение 20--30 мин.

Иногда в производственных условиях инструменты стерилизуют антисептическими растворами. Для этого инструменты на 30--40 мин погружают в один из следующих растворов: 1%-ный спиртовой раствор бриллиантовой зелени; раствор этакридина 1:500; 3--5%-ный раствор карболовой кислоты; 1--2%-ный раствор лизола или жидкость Каретникова (формалина 20,0, карболовой кислоты 3,0, углекислой соды 14,0, дистиллированной воды 1 л).

Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде. Для этого их заворачивают в марлю (чтобы не подгорели) и кипятят в течение 30 мин или холодным способом в парах формалина.

Хранение инструментов.

Все инструменты после операции тщательно моют, стерилизуют и высушивают. Затем их раскладывают в сухом шкафу. Во избежание появления ржавчины на инструментах в шкаф помещают сосуд, наполненный наполовину хлористым кальцием. Инъекционные иглы можно хранить в жидкости Никифорова (спирт с эфиром поровну), при этом в каждую иглу следует ввести мандрен. Темные пятна или ржавчину, образовавшуюся на инструментах, можно удалить с помощью мела с нашатырным спиртом в соотношении 2:1. Резиновые предметы помещают отдельно от металлических инструментов. Нельзя хранить инструменты вместе с препаратами йода, кислотами и т. п.

Шовный материал и способы его стерилизации

В настоящее время в классификации шовного материала учитывают в основном два признака: способность к биодеструкции и структуру нити.

По способности к биодеструкции различают:

рассасывающиеся материалы (кетгут, коллаген, окцелон, кацелон, викрил, дексон и др.);

нерассасывающиеся материалы (шелк, капрон, лавсан, нейлон, пролен, полипролен и др.).

По структуре нити различают:

мононить -- представляет собой однородную структуру с гладкой поверхностью;

полинить -- в сечении состоит из множества нитей (крученые, плетеные, комплексные нити).

К современному шовному материалу предъявляют следующие требования:

Биосовместимость -- отсутствие токсического, аллергенного, тератогенного действия шовной нити на ткани организма. В идеале всякая реакция на шовный материал должна отсутствовать.

Биодеградация -- способность шовного материала распадаться и выводиться из организма. Шовный материал должен удерживать ткани до момента образования рубца, а затем становиться ненужным. При этом скорость биодеградации не должна превышать темп образования рубца, кроме того, шовный материал должен быть атравматичным.

Для наложения хирургических швов также используют льняные и хлопчатобумажные нитки.

Стерилизация шелка

Нити шелка выпускают в бабинах (нестерильных) или в ампулах (стерильных). Намотанный на стеклянные катушки или на стекла с отшлифованными краями шелк кипятят в дистиллированной воде 30--40 мин. Хранят в 96°-ном спирте либо в жидкости Никифорова.

Стерилизуют шелк и в растворах.

Способ Садовского. Мотки шелка помещают на 15 мин в 0,5%-ный раствор нашатырного спирта, а после этого на 15 мин в 2%-ный раствор формалина на 70%-ном спирте.

Способ Тура. Шелк помещают на 24--48 ч в 1 %-ный спиртовой раствор йода. Хранят в этом же растворе.

Стерилизация хлопчатобумажных и льняных ниток.

Эти нитки менее прочные, чем шелковые. Они обычно используются для закрытия дефектов кожи у мелких животных, на стенку кишечника (первый этаж), брюшину. Используют нитки № 10-20. Стерилизуют их по способу Садовского или погружают на 24 ч в 4%-ный раствор формалина.

Стерилизация кетгута.

Кетгут изготавливается из подслизистого и частично мышечного слоев кишечника мелкого рогатого скота, поэтому требует особой тщательной обработки. В зависимости от калибра он рассасывается в тканях животного организма от 7 до 30 дней.

Стерилизация его с применением высокой температуры исключается. Применяется он в основном для погруженных швов. Выпускают его в мотках, требующих стерилизации, или стерильным -- в запаянных ампулах.

Способ Губарева. Намотанный рыхло кетгут на катушках обезжиривают в течение 12--24 ч в эфире или бензине и стерилизуют в спиртовом растворе йода (1 г йода, 2 г калия йодида, 100 г 95°-ного этилового спирта) в течение 14 дней, который заменяют свежим через 7 дней.

Способ Покатило. Без предварительного обезжиривания кетгут на 3 суток погружают в 4%-ный водный раствор формалина.

Способ Садовского--Котылева. Кетгут помещают на 30 мин в 0,5%-ный раствор нашатырного спирта, затем переносят на 30 мин в 2%-ный раствор формалина на 65°-ном спирте, в котором хранят до употребления.

Способ Чубаря. Кетгут погружают на 3 суток в жидкость, состоящую из спирта-ректификата 70°-ного, 200,0; глицерина -- 5,0; настойки йода -- 8,0 и йодистого калия -- 6,0. В этой жидкости кетгут хранят длительное время.

Стерилизация синтетических ниток.

Этот материал стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 20 мин. Металлическая проволока и скобки, а также штифты для соединения костей стерилизуют кипячением, обычно вместе с инструментами.

Стерилизация перевязочного материала, белья и предметов хирургического обихода

Стерилизация автоклавированием. Перевязочный материал (бинты, салфетки, лонгеты, компрессы, тампоны и др.) и хирургическое белье (халаты, простыни, полотенца, колпачки) стерилизуют в автоклавах под давлением. Иногда туда помещают фарфоровую и стеклянную посуду, эмалированные тазики, растворы и др. Перед автоклавированием материал и белье неплотно укладывают в биксы (рис.23). Перед помещением биксов в автоклав открывают боковые отверстия, плотно закрывают крышкой. Если биксов нет, то предметы хирургического обихода помещают в холщовые мешки или пакеты. Давление 0,5 атм соответствует температуре 115° С; 1 атм -- 120; 2 атм -- 134° С.

Перед пользованием автоклавом закрывают спусковой кран водопаровой камеры, открывают крышку автоклава, наливают через воронку воду до 2/3 уровня водомерного стекла, плотно закрывают крышку и тщательно завинчивают болты, после проверки герметичности включают источник нагрева и в течение 15--20 мин выпускают пар; закрывают кран и поднимают давление до необходимого для стерилизации уровня. Контроль стерилизации проводят путем помещения в бикс веществ, температура плавления которых выше 100° С.

После окончания стерилизации автоклав отключают, медленно открывают спусковой кран, постепенно выпускают пар, снижая давление, открывают крышку автоклава, извлекают биксы и сразу закрывают в них отверстия, закрывают крышку автоклава.

Стерилизацию текущим паром производят в специальном стерилизаторе Коха, а при его отсутствии - в ведре или кастрюле с крышкой. В них наливают воду на 1/3 высоты. Начало стерилизации считается с момента выхода пара, температура поднимается до 100° С, продолжительность - не менее 30 мин.

При стерилизации утюжением температуру доводят до 100° С, продолжительность -- не менее 30 мин.

При стерилизации утюжением температуру доводят до 150° С. Перед стерилизацией простыни, марли, салфетки увлажняют водой и проглаживают со скоростью не более 50 см в минуту, проводя по одному и тому же месту 2--3 раза с обеих сторон. Проутюженный материал сворачивают при помощи стерильных пинцетов и укладывают в стерильный бикс или оставляют завернутым в простыню.

Подготовка животного и хирурга к операции

Подготовка животного к операции.

Для благоприятного исхода операции важное значение имеет подготовка к ней животного. Перед операцией у животного проводят клинические исследования, в частности, измеряют температуру тела, дыхание, частоту пульса. Нельзя проводить операцию у животных с повышенной температурой, не рекомендуется также ее проводить при наличии инфекционных заболеваний, у истощенных животных. Если операцию проводят не в срочном порядке, то перед ней животному уменьшают дачу корма и, если это возможно, то назначают голодную диету не более чем на 12 ч.

При выполнении операции с применением наркоза следует иметь в виду, что некоторые препараты, например рометар, во второй половине беременности может вызвать гибель плода. С благоприятным исходом в этих случаях можно проводить операцию под местной анестезией, так как установлено, что она не отражается на развитии плода.

Перед операцией животных выгуливают с целью освобождения толстого отдела кишечника, проводят чистку или частичное обезболивание.

Подготовка операционного поля

Подготовку поля операции проводят в четыре этапа: механическая очистка, обезжиривание, обработка антисептиком (асептизация), изоляция поля операции.

Механическая очистка включает в себя мытье с мылом (лучше хозяйственным), удаление волосяного покрова бритьем или выстриганием. При этом величина подготавливаемого поля должна быть достаточной для обеспечения стерильных условий операции. Механическая очистка является особенно важным этапом в подготовке поля операции и проводить ее необходимо особенно тщательно, поскольку именно благодаря ей удаляется основное количество грязи и микроорганизмов.

Предпочтение отдают сбриванию, поскольку асептизация при этом способе более тщательная. В практике чаще всего используют безопасную бритву. Установлено, что бритье волос лучше всего проводить накануне операции, что позволяет не только тщательно удалить волосы, но и хорошо вымыть операционное поле, которое, как правило, сильно загрязнено. Кроме того, раздражение кожи, наблюдаемое после бритья, исчезает к моменту операции, в результате этого кожа становится менее чувствительна к раствору йода и дерматиты развиваются реже. Случайные ранения кожи во время бритья к моменту операции успевают покрыться плотным струпом за счет свернувшейся крови.

Обезжиривание операционного поля проводят стерильным марлевым тампоном, пропитанным 0,5%-ным раствором нашатырного спирта или бензином в течение 1--2 мин. Обезжиренное поле операции обрабатывают антисептиком по одному из ниже перечисленных способов.

Способ Филончикова--Гроссиха, Сущность его заключается в том, что обезжиренное поле "дубят" и асептизируют 5%-ным раствором йода сначала после механической очистки, а затем непосредственно перед разрезом или после инфильтрационной анестезии. При этом интервал между обработками должен быть не менее 5 мин.

Способ Мыша заключается в том, что после бритья, механической очистки и обезжиривания поле операции обрабатывают 10%-ным водным раствором перманганата калия.

Способ Борхерса основан на применении 5%-ного раствора формалина в 9б°-ном спирте после механической очистки, бритья и обезжиривания кожи. Способ позволяет добиться (в отличие от большинства других способов) стерильности в белковой среде (при загрязнении гноем), поскольку формалин сохраняет при этом свои антисептические свойства.

Обработку операционного поля антисептиком начинают от центра (места разреза или прокола) к периферии. Исключение составляет наличие вскрытого гнойного очага, при котором обработку начинают с периферии и заканчивают в центре.

Изоляцию поля операции проводят с помощью стерильных простынь или клеенок, которые прикрепляют одна к другой специальными клеммами (Бакгауза) или цапками.

Подготовка рук перед операцией.

В процессе операции руки хирурга непосредственно соприкасаются с раной. Известно, что кожа рук, как и всякая другая поверхность тела, содержит множество микробов, значительная часть которых относится к числу патогенных. Микробы находят себе убежища в выводных протоках сальных и потовых желез, в подногтевых пространствах, многочисленных бороздах и складках кожи. Кожа любого участка тела животного также содержит огромное их количество, поэтому подготовка рук перед операцией имеет особо важное значение.

Обработка рук состоит из трех этапов: а) механическая очистка; б) химическая дезинфекция; в) дубление кожи. Некоторые антисептические вещества нередко совмещают в себе бактерицидные и дубящие свойства (спиртовой раствор йода, раствор бриллиантовой зелени и др.), представляя таким образом бактерицидный дубитель или дубящий антисептик. Обработку рук ведут от кончиков пальцев и далее до локтей. Для механической обработки рук необходимо иметь щетки из растительного материала (листьев агавы, пальмы, сабура), конского волоса, синтетические, а также мыло, теплую воду, тазики.

Щетки из конского волоса не переносят кипячения; их обрабатывают антисептическими веществами. Щетки, не бывшие в употреблении, сначала тщательно моют в теплой воде с мылом, прополаскивают, а затем погружают в 3%-ный раствор карболовой кислоты, раствор бактерицида 1:3000 на 1 ч. Хранят их также в этих растворах.

При выборе того или иного способа обработки рук следует всегда иметь в виду, что абсолютно стерильными руки быть не могут, они приобретают лишь относительную стерильность в течение определенного времени.

Все способы обработки рук основаны на двух принципах: дегидратации и дубления кожи.

Применяемые химические вещества обладают бактерицидными свойствами, воздействуют на микробы, находящиеся на поверхности кожи, а дубящие приводят к закрытию выводных протоков потовых и сальных желез и фиксируют в них микроорганизмы.

Наиболее доступными и простыми по применению являются следующие способы.

Способ Альфельда. После тщательной механической очистки в теплой воде с мылом и щеткой руки моют в течение 3 мин. Если руки не вытирают полотенцем, то обрабатывают 90°-ным спиртом, если вытирают - 70°-ным. Когда кожа высохнет, подногтевые пространства смазывают 5%-ным спиртовым раствором йода.

Способ Оливкова заключается в том, что руки сначала моют в течение 5 мин горячей водой с мылом и щеткой, после чего вытирают полотенцем и обрабатывают в течение 3 мин ватой, пропитанной раствором йода 1:3000 в спирте.

При гнойных операциях повторную обработку рекомендуется проводить йодированным спиртом в разведении 1:1000.

Способ Спасокукоцкого--Кочергина. По данному способу руки моют 0,5%-ным раствором аммиака в двух тазиках по 2,5 мин или под текучей струей этого раствора. После вторичного мытья жидкость в тазу должна остаться прозрачной. В противном случае мытье повторяют и руки вытирают полотенцем. Во время операции или при загрязнении рук обработку повторяют.

Способ Напалкова предполагает механическую очистку рук водным раствором едкого калия 1:2000 щетками в течение 5 мин или в тазиках салфетками. Затем руки вытирают полотенцем и обрабатывают денатурированным спиртом в течение 3--5 мин. Подногтевые пространства и складки кожи обрабатывают 5%-ной настойкой йода.

Способ Кияшева основан на использовании моющих свойств 0,5%-ного раствора аммиака, в котором руки моют щетками в течение 5 мин и вытирают полотенцем. Завершают обработкой 3%-ным раствором сульфата цинка (3 мин). Подногтевые пространства и ногтевые ложа обрабатывают 5%-ным раствором йода.

Все вышеперечисленные способы обеспечивают стерильность кожи рук на протяжении 20--30 мин.

В настоящее время применяются новые бактериостатические препараты, которые не вызывают раздражения и воспалительных явлений кожи.

Церигель. На чистые, сухие руки наносят 3--4 г препарата и в течение 8--10 с тщательно растирают. Затем высушивают руки в течение 2--3 мин. При соскальзывании пленки повторная обработка не требуется. Стерильность обеспечивается на протяжении 2 ч.

Предложена также обработка рук 0,5%-ным раствором катапола (стерильность кожи рук до 3 ч) и раствором хлоргексидина биглюконата в 70%-ном спирте в разведении 1:40 с концентрацией активного вещества 0,5%. Стерильной кожа рук остается в течение 4 ч.

Для обработки кожи рук используют также аэрозоли: септонекс и др.

Хирургические перчатки

Ни один из способов обработки рук не доводит их до состояния абсолютной стерильности, поэтому перчатки являются единственным средством, с помощью которого обеспечивается стерильность в бактериологическом смысле этого слова; Это особенно необходимо при проведении операций по поводу гнойно-гнилостных процессов, а также при проведении полостных операций у мелких животных.

Так как целость перчаток нельзя гарантировать, то необходимо производить предварительную обработку рук одним из вышеперечисленных способов, чтобы не допустить переноса на рану "перчаточного сока", состоящего из пота, слущивающегося эпителия и бактерий. Стерилизуют перчатки кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин, а также автоклавированием и в растворах: бактерицида 0,1%-ного -- 15 мин, хлороцида 2%-ного -- 30 мин или в парах формалина -- 24 ч. После гнойных операций перчатки моют, не снимая с рук, в 2%-ном растворе лизола.

8. Обезболивание

При данной операции использовались препараты для наркоза:

Золетил 50, 25% - 4 мл, внутримышечно вводился в течение всей операции;

Пропофол 1% - 56 мл вводился в течение всей операции, внутривенно

Анестезия

В данной операции можно использовать как проводниковую анестезию, так и инфильтрационную.

При инфильтрационной анестезии обычно используют 0,25-0,5% раствор новокаина и значительно реже другие препараты этой группы количеством 10-15 мл на один раз. При проводниковой используются те же анестетики, нов более высокой концентрации - 3,4 или 5%, а количество анестетика зависит от толщины нерва, глубины его залегания, точности топографической ориентировки врача.

9. Техника проведения операции.

Рис. 1. Косой перелом; остеосинтез межфрагментарной компрессией с помощью шурупов и нейтрализующей пластины; схема.

Подготовка. Пациента привязывают в боковом положении и дополнительно фиксируют веревочной петлей, проведенной поверх спины и через пах. Оперируемую конечность располагают сверху и помещают на подушку. Выбривают место разреза, обрабатывают операционное поле 5% раствором йода, обкладывают поле стерильными салфетками

Ход действий. Разрез кожи начинают на большом вертеле и ведут вдоль переднего края бедренной кости до коленного сустава. Поверхностную фасцию, межфасциальную жировую ткань и глубокую фасцию рассекают по краниальному краю двуглавой мышцы бедра, разрез делают такой же длины. После широкого раскрытия краев раны рассекают межмышечный листок широкой фасции бедра, располагающийся каудолатерально на бедренной кости, в месте его прикрепления, затем отделяют латеральную широкую мышцу бедра от кости и оттягивают ранорасширителем краниально. При возникновении кровотечения в результате повреждения мышечных ветвей бедренной артерии и вены в дистальной части разреза сосуды лигируют или коагулируют.

Лучшего обзора латеральной поверхности тела бедренной кости можно достичь, отодвинув ранорасширителем двуглавую мышцу бедра и латеральную головку четырехглавой мышцы бедра.

Рис. 2 Кожа и поверхностная фасция рассечены и широко раскрыты: А -- бедренная кость; а -- двуглавая мышца бедра; b -- латеральная головка четырехглавой мышцы, покрытая фасцией, b" -- промежуточная головка четырехглавой мышцы; с -- большой и короткий аддукторы; а -- квадратная мышца бедра; 1 -- седалищный нерв; 2 -- сосуды мышц

Доступ можно расширить краниально путем мобилизации промежуточной головки четырехглавой мышцы и каудально, приподняв субнадкостнично аддукторы, если это целесообразно.

Бедренная кость -- длинная, подвергающаяся сильному сгибающему воздействию, ее реконструкция требует хорошей стабильности.

Рис. 3. Проведен доступ к диафизу бедренной кости

Остеосинтез пластиной. Пластину (нейтрализующую, стягивающую или опорную) накладывают с краниолатеральной стороны и закрепляют на каждом из основных отломков как минимум тремя, а лучше четырьмя шурупами. Только при переломах в месте перехода в метафиз в короткий фрагмент достаточно вкрутить два шуруп а. При множественном переломе с образованием не кровоснабжаемых, отделенных от надкостницы и точек прикрепления мышц осколков, оптимальным решением является наложение пластины на медиальную сторону перелома (медиальная опора). Она достигается точной репозицией и правильным сгибанием пластины. Оставшиеся дефекты заполняют аутогенным губчатым веществом.

При оскольчатых переломах с повреждением мягких тканей зону перелома не оставляют свободной по принципу биологического остеосинтеза, а соединяют непрямым способом, с дистракцией основного отломка, длинной пластиной, закрепленной на периферическом участке, чем достигают большей ригидности (функция опоры!).

Пластину, тянущуюся до коленного сустава, необходимо приспособить к кривизне бедренной кости. Она не должна располагаться в латеральном углублении сустава коленной чашки, ее закрепляют глубоко на краниальном крае дистального отломка.

Закрытие раны. После помещения на место межмышечного листка широкой фасции бедра, края раны глубокой и поверхностной фасции адаптируют послойно узловым швом (рассасывающимся материалом). При достаточном доступе к тазобедренному и коленному суставу дальнейшее закрытие раны проводят так, как было описано выше. Накладывают шов на кожу. Обрабатывают шов 5% раствором йода.

10. Возможные осложнения, их предупреждение и устранение

1. Жировая эмболия. В связи с распространением жировых частиц в кровяном русле может возникнуть жировая эмболия большого круга кровообращения, малого круга кровообращения и смешанная форма. Возможно сочетание жировой эмболии с травматическим шоком.

Предупреждение - Лечение жировой эмболии комплексное. Его основные направления: -- лечение и профилактика сердечно-сосудистой недостаточности (сердечные, гормональные, антигистаминные, витаминные, сосудорасширяющие препараты); -- лечение и профилактика дыхательной недостаточности (оксигенотерапия, интубация или трахеостомия с искусственной вентиляцией легких при тяжелых формах); -- коррекция водно-солевого, белкового обмена, кислотно-основного равновесия, профилактика и лечение острой почечной недостаточности: глюкозо-солевые растворы и низкомолекулярные декстраны внутривенно, альбумин и белковые кровезаменители, натрия гидрокарбонат, трисбуфер, сосудорасширяющие, осмотические диуретики (лазикс), ингибиторы протеаз (трасилол, контрикал), вагосимпатические блокады, обменные переливания крови, при тяжелой почечной недостаточности -- гемодиализ; -- тщательный уход за больным, туалет кожных покровов, полости рта, трахеобронхиального дерева; -- профилактика и лечение инфекционных осложнений (антибиотики, сульфаниламиды, неспецифические и специфические глобулины и др.); -- в первые часы после возникновения осложнения вводят липостабил или эссенциале по 1 капле в день. Липостабил восстанавливает физиологическое растворение дезэмульгированного нейтрального жира крови уже в ближайшие часы и улучшает общее состояние больных.

2. Анаэробная инфекция (газовая гангрена). Анаэробная инфекция ран наблюдается очень редко, является одним из наиболее тяжелых осложнений остеосинтеза, дает высокий процент летальных исходов и часто вынуждает хирургов прибегать к ампутации. Хотя это осложнение встречается крайне редко, но врачи должны хорошо его знать. Анаэробная инфекция возникает при обширном повреждении больших мышечных массивов, преимущественно при ранениях стопы, голени, бедра и ягодичной области. Факторами, способствующими ее развитию, являются загрязнения ран землей; нарушение кровоснабжения, длительное перетягивание конечности кровоостанавливающим жгутом; общее ослабление организма, вызванное утомлением, охлаждением, недоеданием.

Лечение при анаэробной инфекции состоит из комплекса лечебных методов, применяемых одновременно, но в известной последовательности: -- если не проведена хирургическая обработка, то ее следует провести радикально, вскрыв все карманы; -- для освобождения отечных мышц от сдавления следует произвести разрезы вдоль оси пораженного сегмента конечности, причем разрезы должны проникать до мышц («лампасные» разрезы); -- если анаэробная инфекция развивается в ране, которая уже подвергалась хирургической обработке, следует произвести повторную радикальную хирургическую обработку. Наложение швов после хирургической обработки противопоказано.

3. Остеомиелит -- гнойное воспаление всех элементов кости, сопровождающееся некрозом части ее. Причина развития посттравматического, послеоперационного остеомиелита -- массивная травма с наличием некротических тканей и микробного загрязнения (золотистый стафилококк, гемолитический стрептококк и др.).

Профилактика послеоперационного остеомиелита: -- профилактическое введение антибиотиков; -- выполнение оперативных вмешательств только при отсутствии воспаления или некроза кожи; -- строгое соблюдение асептики и антисептики; -- атравматичность операции; -- тщательный гемостаз; -- наложение швов на рану без натяжения, а при необходимости -- проведение послабляющих разрезов; -- осуществление активного дренажа раны в течение 24 -- 48 ч.

Консервативное лечение остеомиелита: -- после проведения посева гноя на флору и чувствительность ее к антибиотикам проводится целенаправленная антибиотикотерапия (внутримышечно, внутривенно, внутрикостно, внутриартериально); -- рану необходимо орошать антисептическими жидкостями. Оперативное лечение послеоперационных форм остеомиелита включает следующие мероприятия: -- рассечение и иссечение гнойного очага, хорошее его дренирование; -- удаление металлических конструкций и спиц; -- широкое вскрытие секвестральной коробки, удаление некротических тканей, патологических грануляций, секвестров; в дальнейшем с целью фиксации отломков предпочтение следует отдавать чрескостному остеосинтезу аппаратами. Закрытие дефектов костной ткани проводят с помощью мышечной пластики.

4. Нагноение ран. Гнойная инфекция ран является самым частым осложнением как внутреннего, так и чрескостного остеосинтеза. Клинические признаки ее развиваются в большинстве случаев в первые 5 -- 6 дней после операции. В ряде случаев гнойные процессы могут возникнуть и в более поздние сроки, когда субстратом нагноения являются участки позднего (вторичного) некроза.

Лечение состоит в следующем: -- эвакуация раневого отделяемого и создание условий для постоянного оттока гноя; -- при развитии инфекции в зашитой ране -- снятие швов и широкое разведение краев раны; -- рыхлая тампонада полости раны марлевыми тампонами, смоченными антисептическими растворами, гипертоническим раствором натрия хлорида; -- при наличии гнойного затека -- его широкое вскрытие и хорошее дренирование и промывание антисептическими растворами; -- если гнойный процесс поддерживается наличием некротических тканей, показана повторная радикальная хирургическая обработка; больной с выраженным проявлением гнойной инфекции должен находиться на постельном режиме и получать высококалорийное питание, богатое белками и витаминами; -- при выявлении анемии -- переливание небольших доз свежей крови (250 мл) с заместительной и стимулирующей целью; -- применение антибиотиков, которые должны иметь направленный характер, т. е. применять следует только те, к которым чувствительны выделенные из ран микробы; -- конечность должна быть хорошо иммобилизована.

5. Нарушение крово- и лимфообращения. Нередко, особенно при лечении переломов бедренной кости, развивается значительный отек конечности. После придания конечности возвышенного положения он уменьшается, но полностью не проходит. Причиной отека могут быть воспалительные явления вокруг спиц, тромбофлебит, лимфостаз, а также слишком форсированная дистракция. В этих случаях следует проводить постепенную дистракцию, дозированную нагрузку на конечность и лечебную гимнастику.

6. Вторичное смещение отломков.

Вторичное смещение отломков возникает вследствие несоблюдения техники наложения аппарата. В одних случаях смещение отломков происходит при недостаточной их фиксации (слабое натяжение и закрепление спиц, резьбовых стержней, а также колец), в других -- в результате погрешностей, допускаемых в методике внеочагового остеосинтеза, когда не устраняются, а, наоборот, создаются дополнительные смещающие усилия. Неправильно сросшиеся переломы могут наблюдаться у больных с неполностью сопоставленными отломками или с неустраненным вторичным смещением. Преждевременное снятие аппарата нередко приводит к развитию угловых деформаций. Это происходит в тех случаях, когда регенерат имеет слабую механическую прочность и переустройка его не завершилась.

7. Нарушения асептики и антисептики во время операции могла привести к занесению в организм животного патологической микрофлоры, что вызвало бы воспалительный процесс или сепсис.

8. Отторжение опорной пластины.

Профилактикой служат соблюдение септики, асептики во время операции, подбор альтернативных методов лечения.

11. Послеоперационный уход

Ограничение подвижности (мешающие повязки, клеточное или комнатное содержание) до полной консолидации перелома или остеосинтеза, соответственно. Так же для предотвращения разлизывания или нарушения целостности раны на собаку необходимо надеть воротник. Соблюдать осторожность на лестницах, падения с мебели. Содержать в тепле и покое.

Сразу после операции поставить капельницу со стабизолом до 150-200мл, Амоксициллин 3 мл подкожно, кровоостанавливающий препарат - Дицинон 2 мл внутривенно. Курсом - Римадил по полтаблетки 2 раза в день, 5 дней; Кальцитриол по 1 капсуле в сутки, 3 недели. Обработать шов 5% раствором йода, присыпкой, забинтовать.

Каждый день обрабатывать шов о,о5% раствором хлоргексидина или рометаром, террамициновым спреем.

Сделать биохимический анализ крови, рентген, швы снять через 2 недели.

Заключение

Операция прошла успешно. Во время и после операции осложнений не возникло. Исход операции - выздоровление.

Во время операции врач и мед.персонал старался обеспечить максимальную стерильность, отслеживалось общее состояние животного, тщательно дозировался наркоз.

Был выбран метод остеосинтеза пластинами исходя из того, что это был самый оптимальный способ соединения отломков кости. Он обеспечивает максимальную прочность, а так же экономический выгоден.

Так же для более быстрого образования костной мозоли был назначен препарат Кальцитриол в капсулах трехнедельным курсом.

перелом собака хирургический операция

Список литературы

1. Зеленевский Н.В. «Практикум по ветеринарной анатомии» том 1. М.: НиК - 2007г. - 852с.

2. Калашник И.А. « Практикум по общей и частной ветеринарной хирургии». М.: Агропромиздат - 1988г.-303с.

3. Лебедев А.В., В.Я. Лукъяновский, Б.С. Семенов «Общая ветеринарная хирургия». М.: Колос - 2000-448с.

4. Мозгов И.Е. «Фармакология» Москва Агропромиздат 1985г., 414с.

5. Петраков К.А., П.Т. Саленко, С.М. Панинский Оперативная хирургия с топографической анатомией животных. Москва "Колос" 2001г.-423 с.

6. Семенов Б.С. «Практикум по общей и частной хирургии». М.: Колос, 2000г.- 448с.

7. Семенов Б.С., А.В. Лебедев, А.Н. Елисеев «Частная ветеринарная хирургия». М.: Колос, 1997г.-496с.

8. Ткаченко С.С. «Портал о хирургии костной ткани»

9. Фольмерхаус Б., Й. Фревейн «Анатомия собаки и кошки». "Аквариум" Москва 2003г.-580 с.

10. Шебец Х., В. Брасс «Оперативная хирургия собак и кошек» "Аквариум" Москва 2001г.-511с.

Подобные документы

Основные показания к цистотомии. Протокол оперативного вмешательства. Анатомо-топографические данные оперируемой области. Подготовка к операции животного. Стерилизация инструментов, этапы операции. Послеоперационное содержание и курация животного.

контрольная работа , добавлен 28.04.2015


Определение показаний к овариогистерэктомии. Этиология, дифференциальный диагноз, профилактика и систематика заболевания. Подготовка собаки к операции. Фиксация и обезболивание животного. Инструментарий и его стерилизация. План и техника операции.

курсовая работа , добавлен 27.11.2014


Показания и противопоказания к операции кастрации хряков. Подготовка животного к операции, фиксация его во время ее проведения. Подготовка рук хирурга, инструментов, шовного и перевязочного материала. Анатомо-топографические данные оперируемой области.

курсовая работа , добавлен 03.12.2011


Кастрация самок: цель операции. Способы фиксация животного. Место проведения операции. Анатомо-топографические данные. Инструменты, перевязочный материал, медикаменты. Профилактика хирургической инфекции, обезболивание. Техника проведения операции.

курсовая работа , добавлен 06.12.2011


Общая и частная подготовка животного к операции. Подготовка рук хирурга, инструментов, шовного и перевязочного материалов. Анатомо-топографические данные оперируемой области, этапы проведения операции. Меры для предотвращения послеоперационных осложнений.

курсовая работа , добавлен 03.02.2012


Общая и частная подготовка животного к операции. Подготовка рук хирурга, инструментов и материалов. Анатомо-топографические данные оперируемой области, фиксация животного и обезболивание. Послеоперационное лечение, кормление, уход и содержание животного.

история болезни , добавлен 23.12.2014


Прокол рубца - экстренная операция. Общая подготовка животного (коровы) к операции. Стерилизация инструментов. Анатомо-топографические данные оперируемой области. Оперативный доступ. Послеоперационное лечение. Кормление, уход и содержание животного.

курсовая работа , добавлен 08.12.2011


Анатомо-топографические данные оперируемой области. Клинические данные кошки. Подготовка инструментов, животного, операционного поля и рук к операции. Применение инфильтрационной анестезии для обезболивания. Техника операции и послеоперационный уход.

курсовая работа , добавлен 01.09.2012


Показания и противопоказания к операции, общая подготовка животного к ее проведению: этапы, принципы и особенности. Подготовка рук хирурга, инструментов, шовного и перевязочного материалов. Анатомо-топографические данные овец. Принципы обезболивания.

история болезни , добавлен 30.11.2011


Показания и противопоказания к операции в области брюшной стенки у лошади. Подготовка животного к операции. Подготовка рук хирурга, инструментов, шовного, перевязочного материала и хирургического белья. Анатомо-топографические данные оперируемой области.

Из книги "Болезни костной системы животных"
Лукьяновский В. А. и др. Издательство “Колос”, 1984

При закрытых переломах животному оказывают первую помощь. Необходимо ограничить движения и смещение отломков кости, которые могут травмировать мышцы, повреждать сосуды и нервы, а также вызывать сильную болевую реакцию. Кроме того, следует предупреждать переход закрытого перелома в открытый вследствие возможного повреждения и разрыва кожного покрова отломками поврежденной кости, для чего накладывают временную иммобилизирующую повязку и предоставляют животному полный покой.

В случае открытых переломов проводят хирургическую обработку раны. Ее освобождают от загрязнений, посторонних предметов, удаляют мертвые ткани, зону вокруг раны обрабатывают 5%-ной настойкой йода и закрывают салфеткой, а затем иммобилизуют. Для этого используют шинные повязки из фанеры, тонких дощечек, лубока, проволочных прутьев, жестяных или пластмассовых полосок и т. п. Применяют также специальные металлические шины. В целях профилактики образования пролежней в зоне повязки используют подкладочный мягкий материал или пласты серой ваты, которые накладывают на пораженную поверхность под шину.

Иммобилизирующая шинная повязка обеспечивает необходимую фиксацию при переломах в том случае, если она блокирует подвижность суставов выше и ниже места перелома той или иной кости.

В зависимости от характера перелома, вида животного, анатомотопографического расположения той или иной кости и других условий лечение переломов костей может быть консервативным или оперативным. Включает оно некровавые и кровавые методы соединения отломков, а также методы и средства, способствующие стимуляции образования костной мозоли и в целом остеогенеза, консолидации отломков.

Консервативное лечение закрытых переломов кости предусматривает вправление сместившихся отломков и их иммобилизацию, создание хороших условий регенерации и стимуляции заживления переломов. Следует учитывать, что в запущенных случаях отломки кости вправить очень трудно. Поэтому необходимо обеспечить возможно большее расслабление мышц посредством наркоза и местного обезболивания.

Хорошее соединение соприкасающихся отломков кости после вправления достигается наложением иммобилизирующей повязки . Она может быть разной. Однако при любой повязке главное обеспечить отсасывание раневого отделяемого и надежную антисептику. Повязку снимают у молодых крупных животных на 35-40-й день, у мелких - на 20-25-й день, т. е. в период восстановления опорной функции поврежденной конечности, у старых - на неделю позже.

Консервативный метод лечения переломов трубчатых костей у животных имеет преимущества и недостатки. Иммобилизирующая повязка, сдавливая ткани продолжительное время, затрудняет восстановление нарушенного крово- и лимфообращения, в результате чего развиваются застойные явления. Кроме того, фиксация повязкой суставов выключает поврежденную конечность из функциональной нагрузки, а это приводит к задержке формирования костной мозоли и другим осложнениям.

При открытых переломах необходимо провести туалет раны, обработать настойкой йода, сложными порошками и наложить защитную иммобилизирующую повязку. При осложнениях в такой повязке делают отверстие (окно). Это дает возможность систематически обрабатывать рану и постоянно следить за характером заживления перелома. В случае сильного загрязнения раны и значительной травматизации окружающих тканей проводят комплекс интенсивной противосептической терапии.

Оперативное лечение. Операция соединения отломков кости кровавым способом называется остеосинтезом. Показаниями для ее проведения являются открытые и закрытые переломы локтевого и пяточного отростков, бедренной, плечевой, пястной, плюсневой костей у мелких животных и нижней челюсти у крупных и мелких животных, а также перелом лучевой и большеберцовой костей у крупных животных.

Для соединения отломков используют металлические швы, алюминиевую, латунную, никелевую, молибденовую, и медную проволоку диаметром 0,6-1 мм и более, нержавеющие спицы, гвозди, винты, пластинки, скобки, костные трансплантанты, металлические шины, для интрамедуллярного остеосинтеза деревянные, металлические штифты. В последнее время разрабатываются и успешно внедряются полимерные штифты, сильноклеющие средства и ультразвуковая наплавка и сварка костей.

При закрытых переломах остеосинтез следует делать через сутки после травмы. В более поздние сроки проводить вытяжение и репозицию отломков затруднительно. При открытых переломах остеосинтез надо делать по возможности раньше, чтобы профилактировать развитие микрофлоры.

Соединение отломков проволочной шиной используют при переломах тела нижней челюсти. Для этого так называемой внутриротовой шиной (проволочная лигатура) после соответствующей хирургической обработки при открытых переломах соединяют отломки кости. У крупных животных применяют проволоку толщиной 2 мм. При метафизарных переломах кости фиксируют двумя проволочными лигатурами: одну накладывают вокруг боковых резцов с зацепами, а другую-вокруг всех резцовых зубов. При поперечно-косых переломах тела нижней челюсти у лошадей мужских особей отломки фиксируют, соединяя клыки и окрайки соответствующей стороны челюсти (см. Переломы нижней челюсти).

Костный шов осуществляют проволокой, пропуская ее через сделанные в кости отверстия. Концы проволоки закручивают плоскогубцами до прочного соединения отломков. Применяют костный шов при косых или спиральных переломах трубчатых костей и переломах горизонтальных ветвей нижней челюсти. Однако, как отмечает Б. М. Оливков (1949), соединение костей нижней челюсти костным проволочным швом следует выполнять только в крайних случаях, где нельзя наложить внутриротовую проволочную шину, так как прохождение через отверстия проволоки вызывает обострение воспалительных процессов в костях, задерживает мозолеобразование, а иногда вызывает некроз и другие патологические изменения.

Фиксация отломков кости стальными скобами , применявшаяся ранее при переломах бедренной кости у собак, в настоящее время успешно заменена интрамедуллярным остеосинтезом штифтами растительного, металлического или полимерного происхождения. В отдельных случаях этот способ может быть применен для прикрепления отломков пяточной кости у лошадей. Для этого скобки из нержавеющей стали треугольной или п-образной формы изготовляют необходимых размеров по рентгеноснимку и используют для фиксации пяточного бугра следующим методом. Зону перелома предварительно не вскрывают, концы скобок осторожно вбивают в просверленные отверстия кости.

Соединение отломков кости гвоздями . Отломки соединяют при косых, продольных или спиральных переломах трубчатых костей и переломах шейки бедра. Для этого никелированный гвоздь легкими ударами молотка вбивают в просверленное отверстие перпендикулярно направлению линии излома.

Соединение отломков кости шурупами (винтами). Применяют никелированные шурупы при переломах локтевого и пяточного бугров, маклока и большого вертела бедренной кости, а также иногда при метафизарных переломах трубчатых костей. Для этого используют два сверла разного диаметра. Сверлом, близким к диаметру шейки шурупа (но несколько меньшим), просверливают отломленный участок кости, а сверлом диаметром, меньшим на 1-2 мм, чем средняя часть тела шурупа, просверливают тело кости, к которой будет фиксироваться отломок. Такой метод дает возможность очень прочно и надежно соединить перелом и не вызывает раскола костей. После операции накладывается по возможности фиксирующая повязка. Шуруп через новый разрез кожи удаляется через 35-45 дн.

Соединение отломков металлическими пластинками применяют при различных переломах. С этой целью используют прочные несгибаемые пластинки и шурупы. Через отверстия в пластинке и симметричные отверстия в кости перелом соединяют шурупами. Пластинки и шурупы необходимо изготавливать из однородного металла. В противном случае в тканевой жидкости один из электродов будет “разъедаться” и подвергаться коррозии.

Пластинки не снимают до полного заживления переломов. В случае появления через 3-4 нед хромоты, секундарного остита или свищей в оперируемой зоне пластинки извлекают.

Дистракционные шины. Такие шины в последние годы очень успешно применяют в медицинской практике. В ветеринарии их используют в исключительных случаях: при оскольчатых переломах и больших расхождениях отломков по длине, для предупреждения укорачивания конечности.

Дистракционные шины позволяют сочетать остеосинтез с вытяжением. Для этого берут две спицы с винтовыми нарезками и две металлические пластинки с отверстиями. Спицы через просверленные отверстия вводят в дистальный и проксимальный отломки, а пластинки надевают на свободные концы спиц с наружной и внутренней стороны конечности. Правильная репозиция отломков осуществляется с помощью пластинок путем удлинения расстояния между концами спиц. Такие шины позволяют на необходимый срок фиксировать отломки кости после их вправления.

Наложение дистракционных шин должно обязательно сопровождаться применением шинной повязки. Последнюю удаляют одновременно с дистракционными шинами через 20-30 дн., в зависимости от характера заживления перелома.

Интрамедуллярный остеосинтез металлическим штифтом . Операция связана с точным выбором штифта. Для этого проводят рентгенографию. Операцию делают как можно раньше. При повышении общей температуры тела для подавления развития микрофлоры необходимо применять антибиотики (вводят в экстравазат и внутримышечно), и затем после улучшения общего состояния приступают к операции.

За последние 20 лет в ветеринарной хирургии широко стали использовать металлические штифты. Это пластинчатый штифт из нержавеющей стали для мелких животных (Г. А. Михальский, 1954) и желобоватый для крупных животных (А. Д. Белов, М. В. Плахотин, 1957). Штифты, как правило, подбирают по рентгенограмме. Ширина его должна соответствовать самой узкой части костномозгового канала, а длина может быть разной в зависимости от характера перелома и величины поврежденной кости. Например, при высоких переломах необязательно делать штифт во всю длину кости. Для этого достаточно, чтобы штифт прошел в периферической отломок на 4-6 см. При низких переломах длина штифта должна быть большой, чтобы его можно было провести до эпифиза.

Операцию проводят как под сочетанным, так и под местным обезболиванием. В последнем случае в кожу инфильтрируют 0,25%-ный водный раствор новокаина, а в мягкие ткани и костный мозг-2 %-ный раствор новокаина на 30° винном спирте. Спирт-новокаин в костномозговой канал следует вводить со стороны излома. Овцам и телятам инъецируют по 10-15 мл, мелким собакам, кошкам - по 5-7 мл.

Остеосинтез бедренной кости у крупных животных (крупный рогатый скот, молодые животные, овцы, козы, большие собаки) осуществляют штифтом через два разреза. Один разрез длиной 7-10 см делают над местом перелома. Мышцы не разрезают, а отпрепаровывают одна от другой (двуглавая мышца бедра, поверхностная ягодичная мышца и латеральная головка четырехглавой мышцы бедра). После этого удаляют сгустки крови, осколки костей, размозженные ткани и в костный канал вводят спирт-новокаин. Затем рану закрывают стерильной салфеткой и делают второй разрез длиной 4-5 см над большим вертелом.

Поверхностную ягодичную мышцу отводят раневым крючком вперед, тем самым открывая доступ ко дну вертлужной впадины. Со стороны вертлужной впадины просверливают отверстие костномозгового канала. Отверстие можно проделывать и троакаром со стороны костномозговой полости. Штифт в верхний отломок вводят до тех пор, покаконец его не выйдет за линию излома на 0,5-1 см, концы отломков приближают один к другому под тупым углом и, направляя конец штифта в костномозговой канал дистального отломка, придают последнему правильное осевое положение. Только после этого легкими ударами молоточка штифт продвигают в костномозговой канал дистального отломка. Операцию заканчивают припудриванием сложным антисептическим порошком, рану закрывают двухэтажным швом и нанесением защитного покрытия или легкой ватно-коллойдной повязкой (рис. 59).

Рис. 59. Схема введения металлического штифта в костномозговой канал (хирургическая клиника МВА, по А. Д. Белову): А - бедра; Б - плеча.

В случае переломов бедренной кости у мелких животных (маленькие собаки, кошки) и переломов в верхней трети диафиза у овец, коз и крупных собак операцию осуществляют через один разрез, начиная на 3-5 см выше большого вертела и заканчивая на 3-5 см ниже места линии излома. Оперативный доступ при переломах плечевой кости у всех видов животных делают через один разрез с латеральной стороны вдоль этой кости.

Разрез начинают на 5-7 см выше излома и заканчивают на 2-3 см ниже его. Затем тупым путем разъединяют мышцы, в костномозговой канал вводят спирт-новокаин и только после этого для введения штифта на боковой поверхности проксимального отломка на 3-5 см выше линии излома просверливают отверстие под углом 45-50°. Для придания штифту правильного направления верхний край отверстия срезают в виде желобка. Правильную репозицию отломков и введение штифта осуществляют так же, как и при переломах бедренной кости.

При остеосинтезе большеберцовой и лучевой костей делают также один разрез на медиальной поверхности голени и предплечья (техника операции, как и при переломе плечевой кости). После скрепления кости штифтом на операционную рану накладывают глухой шов и легкую защитную повязку. Дополнительной иммобилизации не требуется.

Прочная фиксация отломков обеспечивает свободное положение суставов и позволяет животному в короткое время после операции включать в функциональную нагрузку конечность. Это профилактирует контрактуры и атрофию мышц, в определенной степени нормализует крово- и лимфообращение в поврежденных тканях и значительно ускоряет формирование костной мозоли и заживление перелома.

Консолидацию перелома устанавливают клинически и рентгенографически, штифт удаляют под местным обезболиванием. Для этого через кожу прощупывают головку штифта и над ней делают разрез длиной 2-3 см.

В отверстие головки вставляют крючок и штифт либо извлекают свободно, либо легкими ударами молотка. Послеоперационную рану закрывают общепринятыми методами. Штифт при хороших условиях заживления извлекают в следующие сроки: у крупного рогатого скота, овец, коз и свиней на 25-30-й день, у собак и кошек на 35-45-й день.

В последнее время заслуживает применения перспективный метод остеосинтеза полимерным рассасывающимся штифтом (М. В. Плахотин, Л. Я. Локтионова, В. А. Лукьяновский, Ю. И. Филиппов, Н. И. Очиров и др., 1973). Такой штифт представляет собой стержень с четырьмя продольными ребрами жесткости. Изготовляют его из биодеструктируемого сополимера винильного азотсодержащего мономера с акрилатом, армированного рассасывающимся полимерным волокном. Диаметр штифта 5-14 мм с интервалом 1 мм и длина 250- 420 мм, в зависимости от диаметра штифта. Стерилизуют их либо радиационным облучением дозой 2,5 млрд. и направляют потребителям в стерильной упаковке, либо выдерживанием в течение 24 ч в парах пароформа.

Интрамедуллярный остеосинтез рассасывающимся полимерным штифтом рекомендуется при диафизарных переломах большеберцовой, бедренной и плечевой костей у собак, кошек, овец, лис и других мелких животных. После рассечения мягких тканей над зоной перелома и выведения отломков из раны костномозговой канал просверливают со стороны излома сверлом с Т-образной ручкой и диаметром, соответствующим поперечному сечению штифта.

В верхнем отломке этим же сверлом через костномозговой канал делают отверстие в кости для проведения штифта сверху (в бедренной кости в области вертлужной ямки, в большеберцовой - над латеральным гребнем, в плечевой-над наружным бугром). Длину штифта определяют глубиной костномозгового канала, подгоняют и обрезают штифт скальпелем. Для избежания разволокнения его срезают под углом 30-45° по отношению к оси штифта.

Вводят штифт со стороны излома в верхний отломок кости до выхода его под кожу, потом над ним делают разрез и выводят в рану вверх до тех пор, пока конец его излома останется выступающим на 1 см. Затем соединяют отломки и легкими ударами молотка штифт проталкивают по костномозговому каналу в нижний отломок на всю длину. Для исключения возможного разволокнения штифта во время удара молотком при введении его в костномозговой канал используют специальные металлические насадки, внутренний диаметр которых должен соответствовать диаметру штифта.

Интрамедуллярный остеосинтез полимерным штифтом проводили в хирургической клинике кафедры общей и частной хирургии Московской ветеринарной академии на собаках и овцах при экспериментальных переломах диафизарных большеберцовых и бедренных костей. В послеоперационный период животные чувствовали себя удовлетворительно, общее состояние нормализовалось на 3-7-е сутки, клинические показатели через 2 нед приблизились к исходным. Функция поврежденной конечности у большинства животных полностью восстановилась через 4-5 нед (с правильным восстановлением длинной оси кости). У некоторых собак и овец вследствие некоторого смещения отломков кость срослась под небольшим углом.

Установили, что в процессе заживления переломов полимерный рассасывающийся штифт постепенно набухал и разволокнялся. Это начиналось в зоне соединения отломков и затем распространялось по штифту, расположенному в костномозговом канале. Срок рассасывания штифта 1,5-2 года.

Полимерный рассасывающийся штифт при интрамедуллярном введении нетоксичен, не вызывает в организме выраженной реакции на чужеродное тело, обеспечивает иммобилизацию отломков при переломах большеберцовой и бедренной костей у собак и овец. Применение полимерного рассасывающегося штифта исключает вторичную операцию, обязательную в случаях использования металлического штифта.

УЛЬТРАЗВУКОВАЯ НАПЛАВКА И СВАРКА КОСТНОЙ ТКАНИ

Ультразвук в настоящее время находит все большее применение в медицине и ветеринарии с лечебной и диагностической целью. При травмах костей его используют при наплавке и сварке травмированных костей. В медицине проведены широкие исследования по изысканию наиболее рациональных методов ультразвуковой сварки костей. В ветеринарии на кафедре общей и частной хирургии Московской ветеринарной академии с 1973 г. в творческом содружестве с кафедрой сварки Московского высшего технического училища имени Н. Э. Баумана ведутся изыскания оптимальных вариантов ультразвуковой наплавки.

К настоящему времени экспериментальными исследованиями установлены видовые особенности замещения ультразвуковой наплавки костным регенератом в трубчатых костях у овец и собак в процессе регенерации костной ткани после экспериментального дефектирования. В опытах использовали 20 овец и 19 собак, у которых в области лучевой и большеберцовой костей выпиливали ультразвуком или механически прямоугольную костную пластинку диафиза длиной 12-20 мм, шириной 4-5 мм. В одних случаях в зоне дефекта удаляли костный мозг, в других его сохраняли.

Осушенный стерильными марлевыми дренажами костный дефект заполняли костной стружкой до наружных краев. Пористую наплавку получали воздействием на костную стружку этил-а-цианокрилатом, а также добавлением к нему 5 % этоксилэтилцианокрилата либо аротовой кислоты, плотную - при использовании гетеростружки в декстране с воздействием на него этил-а-цианокрилата.

Во всех случаях полимеризацию наплавки осуществляли ультразвуковым прибором в течение 15-20 с при частоте колебаний 26,5 кГц, амплитуде 50-55 мкм (рис. 60). В последующем, после припудривания антисептическими порошками, на операционную рану накладывали обычные швы и покрывали антисептической повязкой (иногда гипсовой).

В послеоперационный период у животных определяли общее состояние, частоту пульса, дыхания, измеряли температуру, проводили гистологические и биохимические исследования крови (общий белок, белковые фракции, Са и Р). На 15-20, 30, 40, 50, 60, 80, 100, 120, 140, 160, 180 и 200-е сутки после ультразвуковой наплавки брали патматериал и проводили патанатомические, рентгенологические, биохимические и гистологические исследования. Установили, что общее состояние животных за время опытов было во всех случаях удовлетворительным. В первые 2-3 дня после операции как у овец, так и у собак повышалась температура тела, учащались дыхание и пульс до максимума физиологической нормы или несколько выше. В течение первых 5 дн. наблюдалась хромота слабой степени. Заживление ран протекало по первичному натяжению. Бинтовые повязки и швы снимали на 10-12-е сут после операции ультразвуковой наплавки.

Отмечено, что реакция на ультразвуковую наплавку костных дефектов как у овец, так и у собак близка к обычной реакции на операционную костную травму.

По данным рентгенологических исследований, периостальная реакция после наплавки проявляется на 17- 20-й день. Эндостальная реакция при пористой наплавке на рентгенограммах появляется на 25-30-й день, а при плотной - на 40-50-е сут. В последующие сроки до полного замещения наплавки костным регенератом периостальная и эндостальная реакции более выражены.

До 40-60-х сут, по данным рентгенограмм, разницу в развитии послеоперационной реакции в зоне наплавки у овец и собак установить не удается. Следует отметить, что в эти сроки контуры дефекта выражены довольно рельефно, а в зоне наплавки на рентгеносним-ках образуется светло-серая тень, что свидетельствует о развитии регенеративно-восстановительных процессов.

К 80 сут отмечали перекрытие костномозгового канала проксимальнее и дистальнее зоны наплавки в результате эндостального формирования костной ткани. На рентгенограммах это выявлялось в виде плотных серых теней. Такая реакция у овец и собак наиболее выражена при удалении костного мозга. В эти сроки контуры дефекта менее заметны, зона дефекта у овец на рентгенограммах более темная, чем у собак.

У овец контуры дефекта к 100-110 сут слабо заметны, ярко обозначен костный регенерат на месте дефекта, плотность которого по интенсивности тени приближается к плотности интактной костной трубки. Такую рентгенограмму устанавливали у собак на 20-30 дн. позже (вкл., рис. 30).

Клинико-рентгенологическими исследованиями отмечено, что у овец и собак дефект полностью замещается костным регенератом в разные сроки. Так, у овец при пористых наплавках это наступало к 140-160 дн., у собак - позднее 180 дн., при плотных соответственно к 110-120 и 160-180 дн. При плотных наплавках с сохранением костного мозга после операции костномозговой канал приобретает форму правильной трубки, а трубчатая кость в зоне наплавки - правильную форму. При пористых наплавках стенка трубчатой кости в зоне дефекта в эти сроки несколько утолщена внутрь костномозгового канала.

Исследованиями установлено, что полное замещение наплавки костным регенератом у овец наступает быстрее, чем у собак, и эта разница наиболее выражена при использовании плотных наплавок. Таким образом, ультразвуковые приборы можно успешно применять в клиниках для наплавки при дефектировании различных костей у животных.

БИОЛОГИЧЕСКАЯ СУЩНОСТЬ ЗАЖИВЛЕНИЯ ПЕРЕЛОМОВ КОСТЕЙ
(КЛИНИКО-РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКИЕ, ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ, БИОХИМИЧЕСКИЕ И РАДИОИЗОТОПНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ ЗАЖИВЛЕНИЯ ПЕРЕЛОМОВ ТРУБЧАТЫХ КОСТЕЙ

Заживление переломов костей сопровождается как местными, так и общими изменениями в организме. Костная ткань после перелома восстанавливается путем образования костной мозоли (вкл., рис. 34). В процессе регенерации участвуют: внутренний (камбиальный) слой надкостницы, эндост, костный мозг, эндотелий сосудов гаверсовых каналов, молодая соединительная ткань, в последующем метаплазирующаяся в костную (рис. 61).

Рис. 61. Переломы ребер. Образование костной мозоли.

В первичной костной мозоли (А. Д. Белов, 1966) различают: периостальную, или наружную, костную мозоль, развивающуюся из клеток камбиального слоя надкостницы; эндостальную, или внутреннюю, мозоль, образующуюся из клеток эндоста и костного мозга обоих отломков; промежуточную мозоль, развивающуюся из гаверсовых каналов кортикального слоя кости и отчасти из клеток эндоста и периоста; пароссальную, или околокостную мозоль, образующуюся из мягких тканей вблизи перелома. Развитие этой мозоли зависит от степени повреждения окружающих тканей.

В процессе формирования костной мозоли различают следующие основные фазы.

Первая фаза - подготовительная - в течение 48- 72 ч в ответ на травму развиваются серозное асептическое воспаление, экссудация и эмиграция лейкоцитов в мягкие ткани. В это же время в концах отломков возникает травматический остит. Под влиянием остеокластов и их фермента (кислой фосфатазы) в условиях местного ацидоза происходит деминерализация концов отломков по линии излома.

Вторая фаза наступает через 3 сут после травмы и характеризуется образованием соединительнотканной мозоли. Вначале остеоидная ткань формируется в клеточных элементах надкостницы, эндоста и костного мозга на некотором расстоянии от линии излома, то есть в интактной зоне от травмы, а затем этот процесс продолжается к линии излома.

Одновременно остеогенные клетки камбиального слоя надкостницы, костного мозга и эндоста проникают в кровяной сгусток в зоне перелома, постепенно размножаясь, они прорастают его густой сетью кровеносных капилляров. Вокруг костных отломков развивается своеобразная грануляционная ткань, которая представляет соединительнотканную мозоль, где клеточные элементы в ней путем дифференциации превращаются в остеобласты и костные клетки, а промежуточное вещество - в коллагеновые волокна - основную субстанцию.

Для этой фазы характерен процесс возрастания активности щелочной фосфатазы, интенсивности фосфорно-кальциевого обмена. Кроме того, и в сыворотке крови увеличивается содержание фосфора и кальция, повышается активность щелочной фосфатазы и комплексобра-зующих свойств белков с фосфорно-кальциевыми солями.

Третья фаза. Спустя 10-12 дн. формируется костная мозоль, характеризующаяся процессом окостенения. Для остеоидной ткани в это время свойствен процесс оссификации. Главную роль здесь играют остеобласты, вырабатывающие щелочную фосфатазу и угольную кислоту. Образовавшаяся костная ткань не имеет физиологически правильного строения. Постепенно с восстановлением опорно-двигательной функции она подвергается статико-динамической перестройке.

Четвертая фаза сопровождается окончательной перестройкой сформированной костной мозоли с перегруппировкой костных балок согласно законам статики и динамики. Такой процесс протекает продолжительно. За это время костные балки мозоли, не функционирующие в статико-динамической нагрузке, рассасываются, а испытывающие нагрузку формируются и по своей архитектонике приближаются к нормальной кости. Для общих изменений в организме характерна постепенная нормализация биохимических показателей, которые устанавливаются в пределах нормы через 5-8 мес.

Заживление переломов у разных животных имеет свои особенности. Так, лошади и собаки после перелома строго оберегают конечность и включают ее в опорную функцию, когда отломки прочно фиксированы костной мозолью. У этих животных перелом сопровождается развитием серозного воспалительного отека, явления пролиферации выражены слабо, соединительнотканная мозоль формируется к 10-15 сут. Отломки кости срастаются к 35-45 сут.

Крупный рогатый скот, овцы и свиньи щадят трав мированную конечность в первые 3-5 дн., а затем они начинают постепенно включать ее в опорную функцию. Зона воспалительного отека у них более локализована, чем у лошадей и собак, соединительнотканная мозоль формируется к 8-10 сут. Отломки кости у этих животных срастаются к 25-35 сут.

При переломах могут быть осложнения. Наиболее опасными являются остеомиелиты при открытых и огнестрельных переломах, контрактуры и ложные суставы (псевдоартрозы). В последнем случае отмечается стойкая ненормальная подвижность на месте бывшего перелома, которая может возникать в результате нарушения процесса мозолеобразования (рис. 62).

Рис. 62. Схема образования псевдоартроза:
1 - посттравматическое кровоизлияние; диастаз отломков; 2 - образование соединительной ткани в кровяном сгустке (воспалительный остеопороз отломков); 3 - разрастание костной ткани вокруг отломков (превращение соединительнотканной мозоли в фиброзную); 4 - сформировавшийся псевдоартроз.

В настоящее время клинико-рентгенологическими, гематологическими, биохимическими, гистологическими, радиоизотопными и другими методами исследований установлено, что реакция организма на травму сопровождается значительными сдвигами в равновесии организма животных, целым рядом местных и общих расстройств, биохимическими сдвигами в крови и костной системе, нарушением обмена веществ как в зоне травмированного сегмента, так и в организме в целом.

Исследования отечественных и зарубежных авторов, а также экспериментальные и клинические исследования, проведенные на собаках, овцах, свиньях и молодняке крупного рогатого скота на кафедре общей и частной хирургии Московской ветеринарной академии (М.В. Плахотин, Г.А. Михальский, Р.Г. Мустакимов, А.Д. Белов, В.А. Лукьяновский, Л.Я. Локтионова, Ю.И. Филиппов, Н.И. Очиров и др.) позволили к настоящему времени более глубоко вскрыть биологическую сущность заживления переломов костей.

При переломах трубчатых костей в первые 10 сут происходят значительные изменения как в зоне перелома, так и в организме в целом. Этот период характеризуется выраженными клиническими, биохимическими, гистологическими сдвигами. Так, после перелома и остеосинтеза у животных понижается аппетит, повышается температура тела, учащаются пульс и дыхание, местно в области повреждения возникает воспалительный процесс с более или менее выраженным отеком.

На этом фоне уже на 5-е и 10-е сут наблюдаются значительные изменения, сопровождающиеся снижением количества общего белка, альбумина, альбумино-глобулинового коэффициента (А/Г) и повышением содержания неорганического фосфора в крови. В этот период снижается содержание неорганического фосфора в концах отломков, что, по-видимому, связано с местным ацидозом, преобладанием кислой фосфатазы и повышением активности остеокластов, возникающими на фоне воспалительной реакции. Эти явления отмечают также В. М. Васюточкин, Е. М. Гусева (1930), Н. П. Альтшуллер, М. Н. Погорелов (1936), М. В. Плахотин и А. Д. Белов (1967), Мохамед-Эль-Мустафа (1963), З.М. Зеленская (1968) и др. Установлено, что после переломов костей происходит сдвиг активной реакции крови в сторону ацидоза, а в последующем, по мере ослабления острых реактивных явлений, исчезновение воспалительного отека мягких тканей, преобладание регенеративных процессов и формирование костной мозоли, активная реакция крови и тканевой среды постепенно исчезает в сторону алкалоза. Большинство авторов считает, что на фоне ацидоза в костях преобладают процессы рарефикации и рекристаллизации, а при умеренном алкалозе - конденсации и кристаллизации.

Снижение уровня минерального обмена в концах отломков и повышение содержания минеральных веществ в крови в первый период после перелома, по-видимому, связаны с резорбцией минеральных веществ из костной ткани и поступлением их в кровь.

К 10 сут повышается интенсивность белково-минерального обмена в костеобразующих элементах поврежденной кости, нарастает гипопротеинемия на фоне повышения биосинтеза альфа- и бета-глобулинов при одновременном преобладании их распада и сильного снижения уровня альбуминов. Биосинтез гамма-глобулинов превышает интенсивность их распада, в связи с этим количество гамма-глобулинов в сыворотке крови становится выше исходного. Рентгенологически к этому сроку на значительном расстоянии от места перелома устанавливают светло-серые тени периостальных наслоений.

Следовательно, в начальный период в течение 10 сут после перелома трубчатых костей и интрамедуллярного остеосинтеза возникают острые реактивные явления, сопровождающиеся выраженной воспалительной реакцией, повышением температуры тела, учащением пульса и дыхания. При этом снижается количество общего белка, альбуминов, альфа-глобулинов и повышается содержание минеральных веществ в сыворотке крови. В концах отломков и эпифизах поврежденной кости повышается уровень кальция и фосфора. В симметричных участках диафиза и эпифизах интактной трубчатой кости существенных изменений не наблюдается. Рентгенологически к этому сроку в зоне формирующейся костной мозоли устанавливают светло-серые тени, а при радиоизотопном исследовании с помощью Са45, Р32 и метионина S35 выявляют достаточно высокий уровень белкового и минерального обмена (вкл., рис. 54).

В период с 10-го по 25-й день остропротекающие реактивные явления стихают и на рентгенограммах до вольно четко видна формирующаяся костная мозоль. Показатели содержания общего белка нормализуются, а количество альбуминов и альбумино-глобулиновый показатель остаются на низком уровне. Максимально повышается ферментативная активность щелочной фосфа-тазы. К концу 25 сут на рентгенограммах наблюдается начало смыкания периостальной мозоли проксимального и дистального отломков.

В этот период значительно увеличивается содержание минеральных компонентов в периостальной мозоли, прилегающей к концам отломков; и в мозоли на уровне излома. Причем их больше в периостальной мозоли. Уровень минеральных веществ в эпифизах незначительно повышается, а в концах отломков, наоборот, снижается. Радиоизотопными исследованиями установлено, что в формирующейся костной мозоли максимальная интенсивность белкового обмена устанавливается на 15-е сут, а минерального - к 25 дн. К концу этого периода происходит консолидация отломков в полное восстановление опорной функции поврежденной конечности. Следовательно, в период с 10 по 25 сут после перелома и операции остеосинтеза затухают остропротекающие реактивные явления и преобладает выраженная регенерация в зоне перелома. Этот период характеризуется повышением содержания общего белка в крови до исходных показателей, некоторым увеличением количества альбуминов, нормализацией альфа- и бета-глобулинов, высоким уровнем гамма-глобулинов и значительным снижением минеральных элементов в крови. Содержание последних несколько выше исходных показателей, отмечается некоторое снижение их уровня в концах отломков при одновременном повышении его в костной мозоли. Этот период характеризуется максимальным усилением ферментативной активности щелочной фосфатазы, белкового и минерального обмена в костеобразующих элементах поврежденной кости и формирующейся костной мозоли.

Следует отметить, что максимальный уровень белкового обмена в формирующейся костной мозоли предшествует периоду высокой интенсивности и фосфорно-кальциевого обмена. Такое соотношение в белково-минеральном обмене в процессе регенерации костной ткани соответствует существующим биологическим представлениям о том, что в первую очередь формируется белковая матрица, а затем идет кристаллизация минеральных веществ.

В период с 25-х по 60-е сут после перелома и операции интрамедуллярного остеосинтеза нормализуются альбуминовые, гамма-глобулиновые фракции и коэффициент А/Г (альбумино-глобулиновый коэффициент), понижается содержание минеральных компонентов в крови и снижается интенсивность белкового и некоторого фосфорно-кальциевого обмена в костях и костной мозоли. После клинического выздоровления (8-12 мес) активность костных фосфатаз и фосфорно-кальциевый обмен в зоне бывшего перелома удерживается длительное время несколько выше исходного уровня.

Рентгенологически в период с 25-х по 60-е сут устанавливают консолидацию отломков. Плотность теней костной мозоли приближается к кортикальному слою концов отломков трубчатой кости. На фоне. этих изменений нормализуются гамма-глобулиновые фракции, увеличивается количество альбуминов и коэффициента А/Г, содержание которых на 60-е сут достигает исходных величин. Показатели фосфорно-кальциевого обмена в сыворотке крови после некоторого повышения на 35-й день в дальнейшем снижаются, но продолжают оставаться выше исходных данных. Содержание минеральных элементов в концах отломков после незначительного повышения! к 35-м сут вновь снижается на 45-е сут и только к 60-му дню возрастает и остается несколько выше уровня их в кортикальном слое интактного диафиза.

В периостальной же мозоли, прилегающей к концам отломков, и в мозоли на уровне излома количество кальция и фосфора возрастает и продолжает оставаться продолжительное время, как отмечено раньше, выше исходного уровня. Интенсивность белкового обмена, по данным радиоизотопных исследований с применением радиоактивного метионина S35, постепенно снижается и через 60 дн. с момента перелома и операции остеосинтеза становится почти одинаковой. Однако интенсивность белкового обмена остается в 2-3 раза выше, чем в концах отломков.

Следовательно, в период с 25-х по 60-е сут заживления переломов трубчатых костей нормализуется электрофоретическая картина белков сыворотки крови, почти до уровня исходных величин восстанавливается коэффициент А/Г и содержание неорганического фосфора в поврежденных и интактных костях, за исключением формирующейся мозоли, в которой отмечается еще высокий уровень содержания минеральных элементов.

По данным радиоизотопных исследований, уровень белкового и фосфорно-кальциевого обмена снижается, но на 60-е сут продолжает оставаться выше, чем в концах отломков и симметричных участках диафиза интактного бедра. В это время наступает прочная консолидация отломков и полностью восстанавливается опорная функция поврежденной конечности.

Следует отметить, что процесс заживления у разных животных имеет некоторые свои особенности. Так, у овец и у крупного рогатого скота в сравнении с собаками: в зоне повреждения превалирует фиброзное пролиферативное воспаление над экссудативным. У них возникает более ранняя фиксация отломков параоссальной фиброзной мозолью и значительно быстрее наступает консолидация перелома. Переломы костей у овец и телят срастаются на 10 дн. раньше, чем у собак и лошадей.

При переломах костей у животных могут наблюдаться различные осложнения. Наиболее опасные из них - остеомиелиты при открытых и огнестрельных переломах, контрактуры и ложные суставы (псевдоартрозы). Остеомиелиты описаны в соответствующем разделе настоящей книги.

Осложнения при заживлении переломов

Контрактуры образуются при неправильном сращении переломов и носят стойкий необратимый характер. Неполноценных больных животных выбраковывают.

Ложный сустав - стойкая ненормальная подвижность на месте бывшего перелома, возникающая в результате нарушения процесса мозолеобразования (вкл., рис. 25). Следует различать ложный.сустав от замедленного заживления переломов травмированных костей. Если и имеется подвижность на месте перелома даже в относительно отдаленные сроки после перелома, но на рентгенограмме отсутствуют характерные симптомы ложного сустава, то такое явление считают как замедленное заживление перелома.

По патологоанатомической картине различают: фиброзные ложные суставы (концы отломков соединяются фиброзной тканью, имеющей поперечное направление волокон к оси кости); болтающиеся ложные суставы (концы отломков имеют довольно сильное расхождение и подвижность в больших пределах); фибросиновиальные, или истинные ложные суставы (отмечается моделирование концов отломков по форме сустава, покрытие хрящом и соединение их фиброзной капсулой, содержащей серозно-мукозную жидкость).

Этиология . Ложные суставы возникают вследствие нарушения процесса образования соединительнотканной, а затем костной мозоли. Они могут быть при наличии больших дефектов кости в месте перелома и образуются в результате несвоевременной и неправильной репозиции костных отломков и иммобилизации. Ложные суставы возникают при нарушении процесса регенерации костной ткани и при условиях, замедляющих стимулирование и образование костной мозоли. Длительные воспалительные гнойные процессы при открытых переломах- также одна из причин появления псевдоартрозов.

Клинические признаки. Характерные симптомы - безболезненная ненормальная подвижность, отсутствие воспалительной реакции в зоне перелома и атрофия мышц, не участвующих в движении. На рентгенограмме отсутствуют костная мозоль и процесс регенерации, наблюдаются расхождения костных отломков, закругленность их концов и закрытие костномозгового канала компактным слоем костного вещества (при ложных суставах в отдаленные сроки). Закругленные концы отломков покрыты тонким слоем хрящевой ткани, вокруг них сформирована своеобразная сумка (капсула ложного сустава).

Диагноз устанавливают на основании клинических признаков и данных рентгенологических исследований.

Прогноз в смысле восстановления функции конечности неблагоприятный, а для жизни животного - благоприятный.

Лечение. Ложные суставы устраняют оперативным путем. После соответствующей хирургической подготовки зону псевдоартроза вскрывают, удаляют концы отломков и соединяют штифтами. После операции животным предоставляют покой и применяют средства, стимулирующие остеогенез.

Профилактика . Для предупреждения псевдоартрозов необходимо после перелома своевременно и правильно проводить репозицию и иммобилизацию отломков кости. При значительных дефектах в зоне перелома следует как можно сильнее сблизить края отломков. Если они острые, то их спиливают. Ликвидируют также нагноительные процессы. В случае нарушения процессов регенерации кости необходимо выяснить этиологические причины основного и предрасполагающего характера и принять соответствующие меры.
УСЛОВИЯ, ЗАМЕДЛЯЮЩИЕ И СТИМУЛИРУЮЩИЕ ОБРАЗОВАНИЕ КОСТНОЙ МОЗОЛИ

Биологический процесс заживления переломов и продолжительность формирования костной мозоли зависят от своевременной и качественной хирургической помощи, характера и локализации перелома, общего состояния животного, условий кормления и содержания, возраста и других причин.

Причины, замедляющие образование костной мозоли и заживление переломов, могут быть общими и местными. К общим относятся рахит, остеомаляция, авитаминозы, беременность, расстройства функции щитовидной и паращитовидной желез, а также инфекционные болезни.

К местным причинам относятся плохая иммобилизация отломков, расхождение их концов, попадание мягких тканей между ними, значительные разрушения кровеносных сосудов надкостницы и костного мозга, проникновение синовиальной жидкости в щель между отломками (при внутрисуставных переломах), гнойный остит и остеомиелит.

Лечение при замедленном формировании костной мозоли после устранения причин должно быть направлено на применение средств общего и местного воздействия, стимулирующих развитие остеоидной ткани и ее обызвествление. Для этих целей необходимо обеспечить животных полноценными кормами, обогащать рационы витаминами С, D, минеральными добавками, костными опилками, а также использовать функциональную терапию (пассивные движения, проводка, дозированная легкая работа). Из патогенетической терапии следует применять новокаиновые блокады и тканевую терапию, а также ультрафиолетовое облучение, диатермию, кальций-электрофорез.

Заслуживает внимания для стимуляции регенерации костной ткани введение в костномозговой канал спирто-новокаинового раствора (2%-ный раствор новокаина на 30°-ном винном спирте) в первый день после травмы и через 5-6 дн. повторно в зону перелома. Хорошие результаты дают травертины с кормом в дозе 0,2-0,5 г на 1 кг массы животного в течение 30 дн. Это способствует нормализации минерального обмена и ускорению консолидации перелома на 5-10 дн. Такие же результаты получают при использовании пирогенала в дозе 1,5 гаммы (15 МПД - минимальные пирогенные дозы) на 1 кг массы животного в течение 20-30 дн. с интервалом инъекций 48 ч.

Вопросу стимуляции регенерации костной ткани при переломах посвящено большое количество экспериментальных и клинических исследований. Часть предложенных в свое время способов стимуляции не применяется в хирургических клиниках и представляет главным образом лишь исторический интерес.

В специальной литературе приводятся данные о влиянии различных гормонов на восстановительный процесс, так как известно, что в результате травмы активизируются приспособительные механизмы в системе гипофиз - кора надпочечников с усиленным выделением соответствующих гормонов.

Наибольший интерес представляет недавно открытый гормон щитовидной железы тиреокальциотонин (D. H. Coppetal, 1962; F. P. Hirschetal, 1963), продуцируемый парафолликулярными клетками. Доказано, что этот гормон при переломах тормозит резорбтивный процесс в костной ткани, одновременно повышая уровень белкового обмена и активность остеобластов в костном регенерате.

Паратирогормоны щитовидной железы в отличие от других гормонов оказывают направленное действие на клеточные элементы костной ткани. Они влияют на трансформацию остеобластов, усиливают синтез специфических белков, РНК и щелочной фосфатазы.

Установлено, что стероидные гормоны нормализуют обменные процессы при травме, уменьшают некробиоз, повышают синтез мукополисахаридов, усиливают минерализацию мозоли.

Исследованиями других веществ - ацетилхолина, норадреналина, гистамина, вазопрессина установлено их положительное влияние на регенеративный процесс. Это проявлялось в улучшении васкуляризации регенерата, уменьшении хондроидной ткани, усилении оссификации.

В эксперименте и клинике рядом исследователей широко испытано стимулирующее действие травертинов на процесс заживления костных переломов у собак, овец и крупного рогатого скота. Отмечено, что травертиновая подкормка из расчета 0,5 г на 1 кг массы животного в течение 30 дн. с момента травмы повышает ферментативную активность щелочной фосфатазы в костях и сыворотке крови, интенсивность фосфорно-кальциевого обмена в костеобразующих элементах поврежденной кости и тканях формирующейся мозоли и ускоряет на 10-15 дн. консолидацию перелома. Травертин нормализует минеральный обмен в костях и значительно снижает отрицательное влияние металлического штифта на поврежденную кость, уменьшая в ней рарефикационные явления.

Некоторые ученые испытали на разных видах животных при переломах кости спирто-новокаиновые растворы слабых концентраций (1-2 %-ный раствор новокаина на 30°-ном винном спирте). Двукратное введение этого раствора в костномозговой канал и мягкие ткани, окружающие место излома (во время операции остеосинтеза или в первые дни после перелома и на 5-6-й день после травмы), вызывает длительное обезболивание и ускоряет процесс заживления.

В ряде работ исследователей отмечено, что при внутримышечной инъекции пирогенала животным с переломами костей при интрамедуллярном остеосинтезе в дозе 1,5 гаммы (15 МПД) на 1 кг массы животного в течение 30 дн. с интервалами инъекции 48 ч способствует более ранней нормализации показателей общего белка сыворотки крови, усилению интенсивности белково-минерального обмена, активности щелочной фосфатазы в костях и ускорению на 5-10 дн. заживления перелома (вкл., рис. 35).

Успехи физики, связанные с открытием изотопов, создали новые возможности применения последних с лечебной целью в медицине и ветеринарии. Ряд исследователей приходит к заключению, что если относительно большие дозы радиоактивных веществ угнетают процесс формирования костной мозоли, то малые дозы, наоборот, активно стимулируют его.

Введенный в организм перорально и парентерально Р32 быстро исчезает из кровяного русла (через 1,5-2 ч остается его только 2-3 % от введенного количества). Особенно большое скопление Р32 наблюдается в костном скелете и на месте перелома, а также в печени, селезенке, почках, кишечнике, мышцах и меньше в крови, коже и мозге.

По данным Л. М. Капицы и А. Д. Федоровой (1954), радиоактивный фосфор, введенный между отломками кости в дозе 1,6 мккюри на 1 кг массы животного, через день ускоряет заживление перелома, а большие дозы этого препарата действуют угнетающе на образование костной мозоли.

Установлено, что однократное введение в зону перелома костей микродоз фосфора (32/0,01 мккюри на 1 кг массы животного) оказывает благоприятное влияние на заживление переломов, ускоряя соответственно на 5- 10 дн. консолидацию отломков. Отмечено, что местное применение 2%-ного раствора молочной кислоты в целях стимулирования костеобразования при замедленном созревании костной мозоли усиливает регенеративные процессы в основном за счет активизации камбиального слоя надкостницы.

Для стимулирования заживления переломов трубчатых костей у кроликов применяли комплексные соединения микроэлементов кобальта (Со35 и Со50) и меди (Си5) методом электрофореза. Заключался он в следующем: прокладку, пропитанную 0,3 %-ным раствором Со35, накладывали на место перелома и соединяли с анодом гальванического аппарата; сила тока 2,5 мА, экспозиция 25 мин, сеансы ежедневные, курс лечения 25-30 процедур.

К настоящему времени накоплено много данных, свидетельствующих, что внешние электрические поля влияют на восстановительные процессы в кости после перелома.

Ультразвук малой силы (0,05-0,2 Вт/см2) стимулирует процессы консолидации, а сильный может привести к их замедлению вплоть до остановки. Многие исследователи сообщают о значительном ускорении процесса регенерации костной ткани под влиянием малых доз ультразвука (0,1-1 Вт/см), а при дозе свыше 4 Вт/см2 отмечают замедление сращения переломов костей.

Стимулирующее влияние ультразвука на образование костной мозоли объясняется тем, что микромассаж клеток и тканей ультразвуком приводит к смещению в них атомов молекул, вызывает своеобразное встряхивание составных частей цитоплазмы, причем происходит и несвойственный обычным условиям контакт между субстанциями клетки. Это определяет повышение интенсивности ферментативных процессов обмена.

Регенерация костной ткани после облучения гелий-неоновым лазером с длиной волны 6328° А° и различной выходной мощностью 12 мВт приводит к более раннему образованию костной мозоли у облученных групп животных (Н. А. Шугаров, Д. В. Воронков, 1973; В. Н. Кошелев с соавт., 1973; Д. В. Воронков, 1976), причем с увеличением экспозиции от 1 до 10 мин стимулирующий эффект соответственно повышается.

Заслуживает внимания исследование Н. К. Терновой и др. (1977) в эксперименте по влиянию стимулирующего эффекта интерферона на репаративный остеогенез. К числу наиболее активных индукторов иитерферона относится синтетический двухтяжевой полирибонуклеотид инозиновой и цитидиловой кислот.

Интерферон (I. Pofy, С. Pofy, 1963) готовили на стерильном физиологическом растворе с доведением pH до 7,6 в концентрации 1 мг/мл. Препарат применяли внутривенно за 24 ч до операции из расчета 0,2 мг на 1 кг массы животного, затем сразу после операции и впоследствии через 5 сут в течение первого месяца.

Авторы отмечают, что стимулирующий эффект интерферона прослеживается на всех этапах регенерации костной ткани. По-видимому, в основе стимуляции лежит ускорение дифференцирования клеточных элементов, а не элементарная мобилизация пролиферативных свойств клеточных элементов. Более активное течение остеогенеза проявляется ранним формированием костных балок.

Основным феноменом является заметная активизация процессов перестройки костно-тканевого регенерата вплоть до более раннего созревания новообразованной костной ткани и ее органной перестройки. Индуктор интерферона влияет на скорость дифференцирования клеточных элементов и активизирует пролиферацию фибробластов - клеток соединительной ткани.

Пиримидиновые производные (метилурацил и пентоксил) широко испытаны в экспериментальных условиях и проверены в клинической практике при различной патологии человека и животных в связи с их выраженным анаболическим действием на организм, обусловленным активным вмешательством в синтез нуклеиновых кислот и белка.

В. И. Русаков и И. Ф. Грех (1954, 1969, 1970, 1972) доказали противовоспалительное действие пиримидинов. В. Г. Гарибян с соавт. (1959) изучали влияние метацила на течение экспериментальных переломов и отметили, что в контрольной группе дефект кости замещался в среднем за 78 дн., тогда как у животных после введения метацила - за 61 день и цитозина - за 55 дн.

М. А. Корендясов (1961) провел клинико-экспериментальное исследование влияния некоторых пиримидинов (метилурацила, пантоксила и цитрозина) на регенерацию костной ткани. Поставлено 256 опытов на кроликах в возрасте от 2 мес до 3 лет. Всем животным делали однотипную операцию: на передней лапе резекцировали 0,6 см лучевой кости и в область дефекта вместе с антибиотиками вводили пиримидины.

Установлено, что местное применение пентоксила не оказывало влияния на восстановление кости, а метилурацил и цитрозин вызывали ускорение заживления дефекта кости. Гистологические исследования показали, что пиримидины проявляют действие на ранних стадиях остеогенеза. В опытных сериях наблюдалась выраженная периостальная реакция, массивное разрастание костных балок, раннее появление остеоидной ткани. К концу 3-4 нед наступала костная консолидация, а в контрольной серии на 7-10 дн. позднее.

В качестве стимулятора регенерации заживления переломов костей применяют оротовую кислоту, которая была открыта в 1905 г. Biscaro и Belloni, выделивших ее из сыворотки коровьего молока. Позднее ее обнаружили в биологических объектах животного и растительного происхождения: печени, молоке, дрожжах, плесневых, грибах, бактериях, крови, моче и др.

Оротовая кислота относится к производным пиримидиновых оснований. В свободном состоянии она представляет собой кристаллы белого цвета с температурой плавления 345-346°С (с разложением). В кислотах она нерастворима, но хорошо растворяется в щелочах и горячей воде (растворимость в воде при 18°С равна 0,2 %) и обладает выраженными кислотными свойствами, четко образуя соли с металлами.

В отличие от синтетических аналогов урацила (метилурацил и пентоксил) оротовая кислота является нормальным промежуточным продуктом в биосинтезе пиримидиновых нуклеотидов и активно включается в синтез нуклеиновых кислот. Кроме того, она участвует в построении других биополимеров: гликогена, сложных липидов, мукополисахаридов. Существенная особенность оротовой кислоты, отличающей ее от других природных пиримидинов (тимина, урацила, цирозина), - способность включаться в макромолекулярный обмен не в активированной, а в свободной форме благодаря существованию специфического фермента пирофосфорилазы, превращающей оротовую кислоту в оротидин-5-фосфат.

По данным М. М. Патес с соавт. (1937), оротовая кислота и ее производные стимулируют эритро- и лейкопо-эз. Эффективна она при нарушении кроветворения, вызванного лучевым воздействием, оказывает профилактическое и лечебное действие при поражениях печени, вызванных различными гипотоксемическими веществами.

Принципиально новым является использование оротата калия для лечения нарушений печени при сахарном диабете (А. В. Лесничий, 1970). Отчетливое противовоспалительное действие и повышение иммунологической активности организма при введении оротата калия установили многие ученые. В дозе 100 мг/кг препарат повышает активность лейкоцитов и образование антител у кроликов при измененной реактивности организма.

Следовательно, разностороннее влияние пиримидинов на регенерацию различных тканей и органов связано с их активным вмешательством в обменные процессы и в первую очередь стимуляцию протеиносинтеза. Анаболическое действие пиримидинов подтверждено рядом исследователей.

Активность оротовой кислоты проявляется прежде всего в ее отчетливом анаболизирующем и антикатаболическом действии. Многочисленными исследователями отмечена выраженная способность оротовой кислоты ускорять размножение бактерий и стимулировать рост тканей.

При изучении некоторых сторон механизма действия оротовой кислоты В. И. Поралло с соавт. (1975), Г. И. Билич с соавт. (1975) пришли к выводу, что она повышает содержание нуклеиновых кислот и активных кислых нуклеаз в регенерирующих тканях легкого в ранние сроки после операции, в то время как применение оротата калия после гастротомии наряду с увеличением количества нуклеиновых кислот приводит к снижению активности кислой ДНК.

К. Г. Беркгаут (1969) с успехом применил оротат калия в послеоперационном лечении травматических повреждений нервов. Б. М. Новиков (1976) изучал влияние оротовой кислоты на регенерацию повреждений передней брюшной стенки и желудка. Автор отмечает, что оротовая кислота является эффективным стимулятором репаративной регенерации мягких тканей и желудка за счет непосредственного активного вмешательства в синтезе нуклеиновых кислот, а следовательно, и в весь протеиносинтез. Вместе с тем, как показали гистологические исследования, она проявляет местное противовоспалительное и противоотечное действие.

Многообразное влияние пиримидинов на организм сводится по существу к одному явлению - стимуляции протеиносинтеза, что и обусловливает ускорение регенерации различных тканей (соединительная, костная, мышечная ткань, эпителий, выработка антител и др.) на фоне более или менее интенсивного течения репаративных процессов.

Изучено влияние оротовой кислоты на остеогенез при костной травме (М. В. Плахотин, Л. Я. Локтионова, В. А. Лукьяновский, Ю. И. Филиппов и Н. И. Очиров, 1976-1980). Наносили ее на поверхность полимерного штифта под полимерную пленку в дозе 30-50 мг. Рентгенологическими и гистологическими исследованиями авторы установили, что полимерный штифт, имплантированный в костномозговой канал эпифизов с последующим закрытием костного дефекта аутореплантатом, не вызывает каких-либо патологических изменений в костной ткани. Нанесенная на штифт в дозе 35-50 мг оротовая кислота стимулирует остеогенез и ускоряет приживление аутореплантата в 2 раза быстрее по сравнению с контрольными животными (вкл., рис. 32, 33).

Установлено также, что оротовая кислота и при интрамедуллярном металлическом остеосинтезе положительно влияет на регенеративно-восстановительные процессы и развитие костной мозоли (вкл., рис. 31). Металлический штифт, применяемый для остеосинтеза в сочетании с оротовой кислотой, удаляют из костномозгового канала на 5-7-й день раньше обычного срока. Кроме положительных свойств, кислота предупреждает раннее развитие асептического остеомиелита.

Таким образом, для стимулирования заживления переломов костей имеется большое количество средств, своевременное использование которых дает положительные результаты при лечении животных.

Профилактика переломов костей. В основе предупреждения большинства переломов костей лежат мероприятия, направленные на исключение закрытых и открытых механических повреждений, острогнойных воспалительных процессов, локализующихся вблизи костей. Создание надлежащих условий содержания, достаточное поступление в организм животного витаминно-минеральных компонентов, физиологически нормальный обмен веществ также позволяют профилактировать переломы костей. Следует иметь в виду, что даже незначительные травмы, ушибы, механические насилия в некоторых случаях при слабой резистентности организма и запоздалой хирургической помощи могут привести к тяжелым осложнениям. Поэтому первую помощь больному животному необходимо оказывать как можно раньше и квалифицированно.